Clinical case of combination of Mediterranean spotten fever and hemorrhagic fever with renal syndrome


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2023.13.4.93-100

Aliyeva E.E., Kozlovsky O.A., Fedosov I.E., Elster A.G., Odinets T.N., Cherni M.V., Gorovenko N.S., Maliy K.D., Gafarova M.T.

1) Saki Military Clinical Sanatorium named after. N.I. Pirogov, Saki, Russia; 2) Medical Institute named after. S.I. Georgievsky, V.I. Vernadsky Crimean Federal University, Simferopol, Russia; 3) N.A. Semashko Republican Clinical Hospital, Simferopol, Russia; 4) Simferopol City Clinical Hospital № 7, Simferopol, Russia; 5) Alushta Central City Hospital, Alushta, Russia; 6) Center for Hygiene and Epidemiology in the Republic of Crimea and the Federal City of Sevastopol, Simferopol, Russia
For the first time on the Crimean Peninsula, a clinical case of a rare severe combination of Mediterranean spotted fever (MSF) and hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) has been described and confirmed by PCR.
Samples of the patient’s biological material were examined for the presence of genetic markers of pathogens of Mediterranean spotted fever, Crimean-Congo hemorrhagic fever, hemorrhagic fever with renal syndrome, ixodid tick-borne borreliosis, anaplasmosis and ehrlichiosis, leptospirosis and West Nile fever.
A clinical example confirms the relevance of conducting research on natural focal infections, in particular rickettsial infections, on the peninsula

Средиземноморская пятнистая лихорадка (СПЛ), или марсельская лихорадка – основные названия риккетсиоза из группы клещевой пятнистой лихорадки, впервые описанного в 1910 г. в Тунисе французскими учеными A. Conor и A. Bruch. В 20-х годах прошлого столетия другие французские исследователи D. Olmer и J. Olmer предположили, что эта болезнь передается через укус собачьих клещей Rhipicephalus sanguineus. А в 1932 г. J.Caminopetros и B.Contos открыли возбудителя клещевой инфекции – Rickettsia conorii1. Позже было установлено, что заражение может происходить не только при присасывании, но и при раздавливании клеща, попадании инфекционного материала на участки поврежденной кожи, слизистые оболочки, при вдыхании [1].

Распространена СПЛ главным образом в Средиземноморском регионе, а также в бассейнах Черного и Каспийского морей, Индии, Пакистане, Африке [1]. Имеются данные о том, что кроме клещей Rhipicephalus sanguineu, переносчиками возбудителя Rickettsia conorii могут быть клещи Rhipicephalus (R. appendiculatus, R. evertsi, R. simus), Hyalomma (H. aegiptium), Haemaphysalis (H. leachi), Amblyomma (A. hebraeum) [1, 2]. Нужно учитывать, что в современных условиях расширение границ распространенности и встречаемости СПЛ напрямую связано с увеличением туристических потоков во всем мире, в том числе в эндемичные районы, и ростом популярности экотуризма в последние годы. Однако истинная заболеваемость неизвестна ввиду низкой обращаемости населения при легком течении болезни и постановке ошибочных диагнозов при среднетяжелом течении. Важным диагностическим этапом для постановки правильного диагноза и, соответственно, выбора тактики лечения является сбор эпидемиологического анамнеза: пребывание в эндемической местности, род деятельности заболевшего, факт присасывания клеща, сезонность (весенне-осенний период), контакт с животными.

Патогномоничной клинической триадой СПЛ является наличие первичного аффекта, сыпи и регионарного лимфаденита. Первичный аффект выявляется у 50–90% пациентов [1, 3]. При проникновении возбудителя через слизистую оболочку глаз классического первичного аффекта может не быть, и в таком случае следует обращать внимание на наличие у пациента конъюнктивита. Сыпь полиморфная (макуло-папулезная, розеолезная, геморрагическая). По данным D. Matthew Shoemaker [3], в 2021 г., у пациентов из Африки была обнаружена папуловезикулезная сыпь, и в этом случае возникают трудности дифференциальной диагностики с вирусными экзантемами (например, при ветряной оспе) [3]. Экзантема наблюдается у 95–100% больных. [1, 3, 4]. Регионарный лимфаденит в виде увеличения и болезненности лимфатических узлов, расположенных близко к месту укуса, развивается у части больных.

СПЛ имеет преимущественно доброкачественное течение и заканчивается выздоровлением [1], возможны случаи тяжелого течения с поражением жизненно-важных органов (почек, печени, сердца, центральной нервной системы) [1, 5] и летальным исходом. Описаны клинические случаи в Израиле (2020), Великобритании (2006), Португалии (2003), Хорватии (2000) с такими последствиями, как синдром Гийена–Барре, полинейропатия, изменение психического статуса, гепатомегалия, острая почечная недостаточность, тромбоцитопения, гипоксемия, гемофагоцитарный лимфогистиоцитоз, сепсис и летальный исход [3, 6, 7].

Крымский полуостров находится в пределах природного ареала СПЛ [8]. Впервые заболевание было описано в г. Севастополе в 1936 г. А.Я. Алымовым [5, 9]. В 1962 г. А.Л. Лейбман и Е.А. Клюшкина в Крыму подтвердили ведущее значение клещей Rhipicephalus sanguineus в формировании антропургических и природных очагов СПЛ [10]. На Крымском полуострове клещи Rh. sanguineus распространены повсеместно. Крымские биологи И.Л. Евстафьев и соавт., кроме собак, крупного и мелкого рогатого скота, называют птиц как возможных участников-прокормителей личиночной и нимфальной фаз клещей [11]. В разные годы были описаны вспышки численности клещей Rh. sanguineus, что было связано с увеличением количества безнадзорных собак и благоприятными погодными условиями для клещей [12]. Рост заболеваемости СПЛ отмечали в послевоенный период 1947–1949 гг. , в 1980-х гг. и с 1991 по 1996 г. [5, 13, 14].

В последние годы увеличилось число сообщений об утяжелении клинического течения СПЛ с развитием злокачественных форм, заканчивающихся в 1–5% случаев летальным исходом [15–17]. Профессор Д. Рауль первый автор в работе С. Rovery [17] наблюдал тяжелые формы с летальностью до 33% у пациентов, страдающих сахарным диабетом, глюкозо-фосфатдегидрогеназной недостаточностью, хроническим гепатитом, алкоголизмом.

Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС) – зоонозное природно-очаговое вирусное инфекционное заболевание. Для него характерны цикличное течение, синдром интоксикации, лихорадка, геморрагические проявления и развитие у большинства больных острой почечной недостаточности. В Российской Федерации ГЛПС занимает одно из первых мест по заболеваемости среди природно-очаговых инфекций. [18–20]. Единственным источником заражения человека возбудителями ГЛПС, которое происходит без участия членистоногих переносчиков, являются мышевидные грызуны – носители хантавирусов. Инфицированные грызуны выделяют вирус во внешнюю среду со слюной, мочой, экскрементами. Основными путями заражения человека ГЛПС являются воздушно-капельный, воздушно-пылевой и контактный, при котором возбудитель, содержащийся в биологических выделениях зверьков, в виде аэрозоля попадает через верхние дыхательные пути в легкие человека, где условия для его размножения наиболее благоприятны, и затем с кровью переносится в другие органы и ткани. Заражение возможно также через поврежденную кожу при контакте с экскрементами инфицированных грызунов или со слюной в случае покуса зверьком человека.

Заболеваемость СПЛ в Крыму регистрируется ежегодно, а случаи заболевания людей ГЛПС носят единичный характер. По данным государственных докладов Межрегионального управления Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека по Республике Крым и городу федерального значения Севастополю, природные очаги с циркуляцией хантавирусов располагаются в горно-предгорной части Крымского полуострова. Основными носителями вирусов являются серые полевки рода Microtus. На территории Республики Крым за период 2015–2020 гг. зарегистрировано 3 случая заболеваний людей ГЛПС [21, 22]. Сочетание СПЛ и ГЛПС для Крымского полуострова – совершенно незаурядный диагноз. Цель исследования – анализ клинического случая редкого тяжелого течения микст-инфекции СПЛ и ГЛПС с летальным исходом.

Молекулярно-биологическим (генетическим) методом ПЦР исследованы образцы биологического материала пациента на присутствие генетических маркеров возбудителей СПЛ, Крымской-Конго геморрагической лихорадки, ГЛПС, иксодового клещевого боррелиоза, анаплазмоза и эрлихиоза, лептоспироза и лихорадки Западного Нила. Лабораторную диагностику проводили на базе Центра гигиены и эпидемиологии в Республике Крым и городе федерального значения Севастополе в лаборатории особо опасных инфекций. Использовали: «АмплиСенс® Rickettsia conorii-FL» – набор реагентов для выявления ДНК Rickettsia conorii в биологическом материале от людей и клещах методом ПЦР-РВ (РУ от 11.04.2019 г. № РЗН 2018/7219); набор реагентов для выявления PНК вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки в биологическом материале методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной детекцией «АмплиСенс® CCHFV-FL» (РУ от 13.03.2019 г. № ФСР 2012/12997); «ОМ-Скрин-ГЛПС-РВ» – набор реагентов для выявления РНК хантавирусов – возбудителей ГЛПС, позволяющий определить каждый из 4 видов рода Hantavirus (Puumala, Dobrava, Hantaan, Seoul), производства НПК «Синтол»; набор реагентов для выявления РНК/ДНК возбудителей инфекций, передающихся иксодовыми клещами TBEV, Borrelia burgdorferi sl, Anaplasma phagocytophilum, Ehrlichia chaffeensis/Ehrlichia muris в биологическом материале методом ПЦР с гибридизационно-флуоресцентной «АмплиСенс® TBEV», B. burgdorferi sl., A. phagocytophilum, E. chaffeensis/E.muris-FL» (РУ от 22.02.2019 г. № ФСР 2010/09026); «АмплиСенс®ЛПС» – тест-систему для выявления 16S РНК патогенных лептоспир в биологическом ПЦР с ГФЛ-детекцией в режиме реального времени (Декларация соответствия); «АмплиСенс® WNV-FL» – набор реагентов для выявления РНК вируса Западного Нила (WNV) в клиническом и аутопсийном материале от людей, материале от животных, в комарах и клещах методом ПЦР-РВ (РУ от 05.03.2019 г. № ФСР 2011/11503). Дополнительных методов для диагностики ГЛПС – реакции непрямой иммунофлуоресценции (РНИФ) и иммуноферментного анализа (ИФА) – не применяли. .

Приводим клинический пример.

Больной В, 1979 г. р., поступил в инфекционное отделение ГБУЗ РК «Алуштинская центральная городская больница» 04.09.2021 г. Заболел остро 30.08. когда появились сильная слабость, повышение температуры тела до 40 оС, трехкратно – жидкий стул и рвота, а с 02.09 появилась сыпь по всему телу.

Пациент – уроженец Республики Саха (Якутия), в течение последних трех лет проживает в пос. Никита (городской округ Ялта) в частном секторе, имеет домашних животных (кошка, собака). Официально не трудоустроен (предположительно работает на стройке). Контактировал с братом и племянником, у которых проявлялись подобные симптомы (гипертермия, диарея, сыпь), однако на момент госпитализации родственники находились в Якутии. Со слов супруги, пациент несколько дней назад упоминал о наползании «неизвестного насекомого» в область правой лопатки во время разбора старого строения. Новой коронавирусной инфекцией не болел, не привит, за последние 14 календарных дней за пределы города и страны не выезжал. Со слов пациента, страдает хроническим бронхитом. На учете у узких специалистов не состоит.

На 3-й день болезни (01.09.) обратился к терапевту в г. Ялта. Были взяты мазки из зева и носа на антиген SARS-CoV-2 методом ПЦР (№ 267093) и назначено лечение в амбулаторных условиях: цефиксим, амиксин, симптоматическое лечение. На 4-й день болезни (02.09) отмечает появление сыпи на теле. В связи с продолжающейся гипертермией 04.09 (6-й день болезни) повторно обратился за медицинской помощью; выполнена КТ органов грудной полости без контраста (изменений легочной паренхимы не отмечено). Был госпитализирован в инфекционное отделение ГБУЗ РК «Алуштинская ЦГБ» с диагнозом: «острый гастроэнтерит».

Состояние при поступлении расценено как среднетяжелое. Назначена антибактериальная (цефтриаксон 2,0 г в сутки в/в капельно), дезинтоксикационная терапия. На ее фоне 08.09 (10-й день болезни) состояние больного ухудшилось, развился генерализованный эпиприступ, купированный введением сибазона 5 мг/мл – 2,0 мл двукратно. Со слов супруги, приступ эпилепсии развился впервые и ранее подобных эпизодов не было. Вербальный контакт с пациентом был потерян.

Объективно: состояние больного на момент осмотра 08.09 тяжелое. Отмечается психомоторное возбуждение, вербальному контакту не доступен, команды не выполняет. По шкале комы Глазго (ШКГ) в баллах уровень сознания – умеренное оглушение – 13 баллов, глазные щели и зрачки симметричные справа и слева (D=S), фотореакция сохранена, носогубные складки симметричны, сухожильные и периостальные рефлексы живые симметричные справа и слева (D=S), мышечный тонус сохранен, движение в конечностях в полном объеме. Менингеальных знаков и патологических рефлексов не выявлено. Кожные покровы смуглые, отеков нет. На 10-й день болезни (08.09) склеры и слизистые оболочки приобрели иктеричную окраску. Отмечена мелкопятнистая сыпь на передней поверхности грудной клетки, живота, конечностей, поверхностях стоп и ладоней. Сыпь не исчезает при надавливании. Время рекапилляризации ногтевого ложа более 3 с. Зев умеренно гиперемирован. Слизистая оболочка губ сухая. Лимфоузлы не увеличены, пальпируются размером 1,0×1,0 см. Дыхание спонтанное эффективное, ЧД 20–22 в 1 мин., SpO2 96% без кислородной поддержки. Аускультативно в легких выслушивается жесткое дыхание во всех полях. Тоны сердца приглушены, ритмичные, АД 130/80 мм. рт. ст., пульс 90 ударов в 1 мин., удовлетворительного наполнения. Живот мягкий, на пальпацию не реагирует, перистальтика выслушивается. При пальпации печень выступает из-под реберной дуги на 4 см, селезенка у края реберной дуги. Симптомы раздражения брюшины, поколачивания отрицательные. При ректальном исследовании: тонус сфинктера сохранен, ампула прямой кишки пустая, на перчатке следы кала желтого цвета.

Учитывая тяжесть состояния и отрицательный результат ПЦР на антиген SARS-CoV-2 от 04.09. больной переведен в отделение анестезиологии, реанимации и интенсивной терапии, где ему проводили инфузионную терапию, а также дополнительные исследования. После совместного осмотра заведующего инфекционным отделением с врачом-реаниматологом поставлен диагноз: «сепсис неясного генеза. Синдром выраженной эндогенной интоксикации Явления выраженной печеночно-почечной недостаточности на фоне обезвоживания и выраженного ацидоза. Дисметаболическая энцефалопатия. Острый респираторный дистресс синдром I стадии».

На 12-й день болезни (10.09.) состояние больного оставалось крайне тяжелым, без положительной динамики, в связи с чем проконсультирован специалистами по линии санавиации. Осмотрен врачом-инфекционистом. который отметил: на коже головы, туловища, конечностей, в том числе на ладонях и стопах, макуло-папулезная сыпь, не возвышающаяся над поверхностью кожи, не исчезающая при надавливании, до 3 мм в диаметре. В области правой лопатки – первичный аффект в виде струпа до 9 мм в диаметре. Учитывая клинические данные, была заподозрена СПЛ. Рекомендовано исследовать кровь на выявление ДНК риккетсии методом ПЦР, а в проводимой терапии в качестве этиотропного препарата (с учетом чувствительности риккетсий к антибиотикам тетрациклинового ряда) добавлен антибактериальный препарат доксициклин по 0,1 г 2 раза в день.

Результаты лабораторных исследований: анализ крови на ВИЧ-инфекцию от 04.09 отрицательный; исследование мазка из зева и носа методом ПЦР на антиген SARS-CoV-2 от 04.09 и 08.09 отрицательные; исследование крови на малярию, лептоспироз, лихорадку Западного Нила, иерсиниоз от 08.09 отрицательные.

В связи с крайне тяжелым состоянием больной ночью 10.09 (12-й день болезни) переведен на третий уровень оказания медицинской помощи в Республиканскую клиническую больницу им. Н.А. Семашко и госпитализирован в отделение анестезиологии и реанимации с палатами реанимации и интенсивной терапии № 1. Состояние при поступлении: по ШКГ в баллах уровень нарушения сознания – глубокое оглушение – 11–12 баллов, оценка органной недостаточности по шкале SOFA (Sepsis-related Organ Failure) – 10 баллов, зрачки симметричные справа и слева (D=S), фотореакция сохранена. Бульбарный синдром не выражен. Менингеальные знаки отрицательные. Дыхание в легких спонтанное, аускультативно жесткое, ослабленное в нижних отделах, хрипы не выслушиваются. ЧД 18–20 в 1 мин., SpO2 98–100% на кислородной поддержке через лицевую маску. Гемодинамика стабильная, АД 130/80 мм рт. ст., пульс 90–98 ударов 1 в мин. На 12-й день болезни отмечена иктеричность кожных покровов. По всей поверхности тела, включая подошвы и ладони, сохраняется мелкопятнистая сыпь с элементами до 3 мм в диаметре, не возвышающаяся над поверхностью кожи, не исчезающая при надавливании, не склонная к слиянию (рисунок см. на вклейке).

p2-1.jpg (35 KB)

На кожных покровах в области правой лопатки визуализируется первичный аффект в виде эрозии, покрытый темной корочкой до 9 мм в диаметре. Периферические лимфатические узлы не увеличены. Живот мягкий, безболезненный.

Нарастание отрицательной динамики в течении болезни подтверждают результаты лабораторных исследований крови пациента: выявлены признаки нарастания анемии, критического снижения количества тромбоцитов, воспаления (табл. 1).

96-1.jpg (79 KB)

Результат исследования спинномозговой жидкости (СМЖ) от 08.09.2021 г.: бесцветная, прозрачная, белок 0,066 г/л, сахар 3,3 ммоль/л, цитоз 6 клеток (70% лимфоциты).

Динамика биохимических показателей крови пациента представлена в табл. 2. Она отражают нарастание почечно-печеночной недостаточности и развитие сепсиса.

97-1.jpg (164 KB)

Результаты лабораторных исследований мочи пациента указывают на наличие мочевого синдрома различной интенсивности.

10.09 в образце крови, исследованной методом ПЦР на СПЛ, обнаружена ДНК Rickettsia conorii (цикл обнаружения Ct – 30,38; тест-система «АмплиСенс® Rickettsia conorii-FL»).

Результаты дополнительных исследований: микроскопия мазка-отпечатка из первичного аффекта на лейшманиоз от 11.09 – результат отрицательный; микроскопия пунктата костного мозга – лейшмании не обнаружены; исследование крови методом ПЦР от 13.09 присутствия генома вируса Крымской-Конго геморрагической лихорадки, Borrelia burgdorferi, Anaplasma phagocytophyllum, Ehrlichia Chaffeensis/muris не выявило.

13–14.09 пациент осмотрен и проконсультирован врачами-инфекционистами Крымского республиканского центра медицины катастроф и скорой медицинской помощи. Состояние больного крайне тяжелое, уровень сознания – кома 2. Кожные покровы иктеричные, слизистая оболочка ротоглотки эрозирована, налетов нет. Язык влажный, обложен коричневым налетом. Склерит, конъюнктивит. По всей поверхности тела, включая подошвы и ладони, – макулопапулезная сыпь, мелкая, с элементами до 3–4 мм в диаметре, геморрагического характера, не возвышающаяся над поверхностью кожи, не исчезающая при надавливании, не склонная к слиянию. При осмотре в области правой лопатки – первичный аффект в виде эрозии, без корочки, окруженный венчиком гиперемии до 8–9 мм в диаметре, с ровными, плотными краями. Периферические лимфатические узлы не увеличены, подвижные, безболезненные. Живот мягкий, безболезненный. Печень пальпируется у края реберной дуги, обычной эластичности, на пальпацию не реагирует. Селезенка не пальпируется. Симптомы раздражения брюшины, поколачивания отрицательные. Мочеиспускание по катетеру – моча интенсивно окрашена в желтый цвет, по назогастральному зонду наблюдается содержимое в умеренном количестве по типу «кофейной гущи». Стул полуоформленный, коричневого цвета, без патологических примесей. Отмечается пастозность лица, верхних и нижних конечностей.

Учитывая наличие у больного почечно-печеночной недостаточности, умеренного геморрагического синдрома, проведено исследование крови на хантавирусы методом ПЦР 14.09, обнаружен геном хантавируса (цикл обнаружения Ct–20,38)

Установлен диагноз: «микст-инфекция: СПЛ и ГЛПС, (ПЦР-подтвержденная), тяжелое течение. Сепсис. Полиорганная недостаточность. Энцефалопатия смешанного генеза».

Пациенту рекомендовано продолжить антибактериальную (доксициклин в комбинации с ципрофлоксацином), дезинтоксикационную, органопротективную терапию (свежезамороженная плазма, альбумин, концентрат тромбоцитов), увеличить дозу глюкокортикоидов, мочегонных препаратов, усилить гемостатическую терапию. Консультация– гематолога, ревматолога, нефролога, хирурга в динамике, при необходимости – повторная консультация инфекциониста. Лабораторный мониторинг. Эфферентные методы детоксикации не применяли из-за отсутствия в отделении необходимого медицинского оборудования.

На фоне проводимой терапии состояние пациента несколько стабилизировалось, однако оставалось крайне тяжелым. 20.09. (22-й день болезни) на фоне прогрессирующей острой сердечно-сосудистой недостаточности наступила внезапная остановка эффективного кровообращения. Реанимационные мероприятия оказались не эффективны. Констатирована биологическая смерть.

Патологоанатомическое вскрытие не выявило расхождения клинического и патологоанатомического диагнозов. Обращают на себя внимание гистологически подтвержденные некротический нефроз и миелоз селезенки, отек легких и головного мозга, двусторонняя фибринозно-гнойная пневмония. При бактериологическом исследованиия крови отмечен рост Acinetobacter baumannii.

Это первый в Крыму описанный случай редкого сочетания СПЛ и ГЛПС – двух природно-очаговых инфекций с разными механизмами передачи.

Из-за неоднозначности клинических проявлений, что усугубилось развитием микст-инфекции, возникли значительные трудности в дифференциальной диагностике. Диагноз не был своевременно поставлен, следствием стало отсутствие этиотропной терапии ГЛПС в начальном периоде, а затем и в разгар заболевания, и позднее (на 12-й день болезни) начало этиотропной терапии (доксициклином) СПЛ. Проводимая патогенетическая терапия была направлена на уменьшение интоксикации, профилактику специфических осложнений (инфекционно-токсического шока, острой почечной недостаточности, отеков легких и мозга, ДВС-синдрома), коррекцию нарушений водно-электролитного баланса, восстановление резистентности сосудистой стенки, устранение нарушений со стороны сердечно-сосудистой системы и антибактериальную терапию бактериальных осложнений. Пациент получал антибактериальную (доксициклин в комбинации с ципрофлоксацином), дезинтоксикационную, органопротективную терапию (в том числе свежезамороженную плазму, альбумин, концентрат тромбоцитов), глюкокортикоиды, мочегонные препараты и гемостатическую терапию.

Представленный клинический случай демонстрирует важность тщательного сбора эпидемиологического анамнеза, настороженности и более углубленного изучения эпидемиологии и полиморфизма клинической картины эндемичных заболеваний в повседневной работе врачей всех специальностей. Необходимо обратить внимание на важность привлечения узких специалистов, проведение консилиумов, консультаций телемедицины в сложных случаях при постановке диагноза. Нужно учесть, что и риккетсиозы, и геморрагические лихорадки могут скрываться под маской других инфекционных заболеваний, а в условиях сложившейся неблагополучной эпидемической ситуации по новой коронавирусной инфекции (загруженность работников сферы здравоохранения, доступность медицинской помощи и позднее обращение за ней) затрудняют установление истинного диагноза и, соответственно, несвоевременное начало этиотропного лечения [23, 24], что, в свою очередь, отрицательно влияет на исход заболевания. Поэтому важное значение на пути выявления риккетсиозов и геморрагических лихорадок имеет лабораторная диагностика с применением современных молекулярных методов с доказанной достоверностью. Применение тест-систем для ПЦР позволяет обнаружить генетический материал возбудителя в биологических образцах (лейкоцитарной фракции крови, моче, смывах из первичного аффекта и других), определить этиологический агент при моно- или микст-инфекции, что важно при выборе тактики лечения. В описанном случае пациенту была назначена антибактериальная терапия, а после консультации специалистов санавиации и подозрения на СПЛ добавлен препарат выбора доксициклин.

Необходимо знать, что профилактические мероприятия при СПЛ и ГЛПС представлены только блоком неспецифической профилактики, поскольку меры специфической профилактики не разработаны. Неспецифическая профилактика СПЛ включает комплекс противоклещевых мероприятий [санитарно-экологическое преобразование окружающей среды, дератизационные мероприятия, обработку акарицидными (инсектоакарицидными) средствами участков территорий природных и антропургических очагов]; меры индивидуальной противоклещевой защиты [соблюдение правил поведения на опасной в отношении клещей территории, применение специальных химических средств (акарицидных и акарицидно-репеллентных) для обработки верхней одежды и использование (ношение) специальной защитной одежды] и информационно-разъяснительную работу с населением. Местное население и миллионы ежегодно приезжающих в Крым туристов должны быть проинформированы о возможных последствиях контакта с клещами, мерах профилактики и симптомах инфекций, передаваемых клещами.

Неспецифическая профилактика при ГЛПС включает комплекс методов и средств дератизации и дезинфекции и проведение мероприятий по уничтожению грызунов в очагах ГЛПС; защите населения от соприкосновения с грызунами или предметами, загрязненными их выделениями; недопущению образования и ликвидации свалок мусора, сухостоя вблизи населенных пунктов, дачных массивов, оздоровительных учреждений; снос ветхих строений; использование средств индивидуальной защиты при выполнении этих работ и информирование населения об условиях заражения, проявлениях и мерах профилактики ГЛПС.

Заключение

Для установления правильного диагноза ключевую роль играют возможности лабораторной диагностики. В соответствии с действующими нормативными документами для лабораторной диагностики СПЛ и ГЛПС используют иммунологические и молекулярно-генетические методы исследования, для ГЛПС – еще и вирусологический.

Лабораторная диагностика СПЛ включает методы выделения возбудителя и серологические методы определения специфических антител. До сравнительно недавнего времени методы выделения возбудителя были доступны лишь в специальных условиях определенных лабораторий, что не позволяло применять их в рутинной работе практикующих врачей и при таких обстоятельствах серологические методы – реакция связывания комплемента, реакция непрямой гемагглютинации, реакция непрямой иммунофлюоресценции, иммуноферментный анализ – получили широкое распространение. Недостатками серологических тестов являются неэффективность использования в начале заболевания, поскольку антитела к СПЛ появляются не ранее 5–7-го дня, а иногда только к 10-му дню болезни, а также невозможность проведения внутригрупповой идентификации возбудителя. Новым витком прогресса в области лабораторной диагностики стало внедрение методик применения моноклональных антител, вестерн-блот. На современном этапе лидируют достижения молекулярной биологии – метод ПЦР с множеством разновидностей, технологией амплификация нуклеиновых кислот и секвенированием.

Лабораторную диагностику ГЛСП проводят методами флуоресцирующих антител, иммуноферментного анализа, иммуноблота с целью выявления специфических суммарных антител или антител класса IgМ и класса IgG, а также методом ПЦР для выявления РНК возбудителя ГЛПС.

Описанный нами клинический пример подтверждает актуальность проведения исследований природно-очаговых инфекций на Крымском полуострове, необходимость повышения информированности врачей и внедрения комплексного лабораторного обследования пациентов с лихорадкой неясной этиологии на природно-очаговые инфекции в частности, на клещевые риккетсиозы, а также предназначен для врачей разных специальностей как возможный инструмент в сложном диагностическом поиске.


Literature


1. Злобин В.И., Рудаков Н.В., Малов И.В. Клещевые трансмиссивные инфекции. Новосибирск: Наука, 2015. 224 с.


Zlobin V.I., Rudakov N.V., Malov I.V. (Tick-borne infections). Novosibirsk: Nauka, 2015. 224 p. (In Russ.).


2. Кулагин С.M. К вопросу ликвидации Марсельской лихорадки. Некоторые наблюдения по марсельской лихорадке в Севастополе. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии 1960; (8): 117–21.


Kulagin S.M. (On the elimination of the Marseilles fever. Some observations on the Marseilles fever in Sevastopol.) J. Microbiol. Epidemiol. Immunobiol. 1960; (8): 117–21. (In Russ.).


3. Matthew Shoemaker D. Mediterranean Spotted Fever (Boutonneuse Fever) Differential Diagnoses, Medscape, Sep 15, 2021.


4. Алымов А.Я. Марсельская лихорадка. Советская медицина 1939; 13: 30–3.


Alymov A.Ya. (Marseille fever). Sovetskaya Meditsina, 1939; 13: 30–3. (In Russ.).


5. Гафарова М.Т. Марсельская лихорадка (эпидемиология, клиника, диагностика). Симферополь: Тарпан, 2004. 98 с.


Gafarova M.T. (Marseille fever (epidemiology, clinic, diagnostics)). Simferopol': Tarpan, 2004. 98 p. (In Russ.).


6. Karra N., Dolinski R., Akria L., Yampoulski Y., Awad J. A Case of Hemophagocytic Lymphohistiocytosis Associated With Mediterranean Spotted Fever in a Healthy 29-Year-Old Female. Open. Forum Infect. Dis. 2020; (10): ofaa355. DOI: 10.1093/ofid/ofaa355


7. Chipp E., Digby S. Rickettsia: an unusual cause of sepsis in the emergency department. Emerg. Med. J. 2006; (11): e60. DOI:10.1136/emj.2006.040113


8. Гафарова М.Т., Бондаренко Е.И., Малый К.Д., Алиева Э.Э., Евстафьев И.Л., Товпинец Н.Н. и др. Распространенность возбудителей трансмиссивных клещевых риккетсиозов на Крымском полуострове. Клин. лаб. диагностика 2022; (3): 170–6. DOI: 10.51620/0869-2084-2022-67-3-170-176


Gafarova M.T., Bondarenko E.I., Maliy K.D., Alieva E.E., Evstafiev I.L., Tovpinec N.N. et al. (Prevalence of causative agents of transmissive tick-borned ricketsious in the Crimean peninsula). Clinical laboratory diagnostics 2022; 67(3): 170–6. (In Russ.).DOI: 10.51620/0869-2084-2022-67-3-170-176


9. Малый К.Д., Андрухив И.Ю., Товпинец Н.Н., Кириченко В.Е., Дегтярева А.А., Альянаки Л.Н. и др. Марсельская лихорадка. Динамика заболеваемости в Крыму по данным лабораторной диагностики. Таврический медико-биологический вестник 2000; (3–4): 240–3.


Maliy K.D., Andrukhiv I.Yu., Tovpinets N.N., Kirichenko V.E., Degtyareva A.A., Alyanaki L.N. et al. (Marseilles fever. Morbidity dynamics in Crimea according to laboratory diagnostics data). Tavrichesky mediko-biologicheskiy vestnik 2000; (3–4): 240–3. (In Russ.).


10. Alieva E.E., Bondarenko E.I., Мaliy K.D., Shvalov A.N., Verbenets E.A., Gafarova M.T. The role of Rhipicephalus sanguineus mites parasitizing on dogs in the spread of tick-borne rickettsiosis pathogens in Sevastopol. New Microbes New Infect. 2020; (36): 100704. DOI:10.1016/j.nmni.2020.100704


11. Евстафьев И.Л., Товпинец Н.Н. Rhipicephalus sanguineus (Ixodidae) в Крыму: экологические и эпизоотологические аспекты. Вестник зоологии 2002; 36(4): 85–91.


Evstafiev I.L., Tovpinets N.N. (Rhipicephalus sanguineus (Ixodidae) in Crimea: ecological and epizootological aspects.). Vestnik Zoologii 2002; 36(4): 85–91. (In Russ.).


12. Небогаткин И.В., Товпинец Н.Н. Вспышка численности кровавого клеща Rhipicephalus sanguineus (Ixodidae) на Керченском полуострове. Вестник зоологии 1997; 31(4): 81.


Nebogatkin I.V., Tovpinets N.N. (The outbreak of the bloody tick Rhipicephalus sanguineus (Ixodidae) on the Kerch Peninsula). Vestnik Zoologii 1997; 31(4): 81. (In Russ.).


13. Пакшин М.Ф., Егошина Л.И., Важинская Л.И. К вопросу заболеваемости марсельской лихорадкой за 54 года (1947–2000 гг.). Сборник научных работ специалистов санитарно-эпидемиологической службы в г. Севастополе. Ставрополь, 2002: 105–11.


Pakshin M.F., Egoshina L.I., Vazhinskaya L.I. (On the incidence of Marseilles fever for 54 years (1947–2000)). A collection of scientific papers by specialists of the sanitary-epidemiological service in Sevastopol. Sevastopol, 2002: 105–11. (In Russ.).


14. Тарасевич И.В. Развитие учения о риккетсиях и риккетсиозах. Инфекционные болезни: новости, мнения, обучение 2017; (2): 22–30.


Tarasevich I.V. (The development of the doctrine of rickettsia and rickettsiosis). Infectious diseases: news, opinions training.2017; (2): 22–30. (In Russ.).


15. Baltadzhiev I., Popivanova N., Zaprianov Z. Malignant forms of Mediterranean spotted fever: risk factors for fatal outcomes. Braz. J. Infect. Dis. 2016; 20(5): 511–2.


16. Rovery С., Raoult D. Mediterranean Spotted Fever. Infect. Dis. Clin. North. Am. 2008; 22: 515–30.


17. Rovery С., Brouqui Ph., Raoult D. Questions on Mediterranean Spotted Fever a Century after Its Discovery. Emerg. Infect. Dis. 2008 ; 14(9): 1360–67.


18. Котова М.Е., Салухов В.В., Добровольская Л.М. Клинический случай пациента с геморрагической лихорадкой с почечным синдромом, осложненной кровоизлиянием в гипофиз. Consilium Medicum 2017; 19(4): 86–90.


Kotova M.E., Salukhov V.V., Dobrovolskaya L.M. Clinical case patient with hemorrhagic fever with renal syndrome, complicated by the pituitary apoplexy. Consilium Medicum. 2017; 19(4): 86–90.


19. Бондаренко А.Л, Аббасова С.В., Коробицын К.Г. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом в Кировской области на современном этапе. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2015; (5): 7–12.


Bondarenko A.L., Abbasova S.V., Korobitsyn K.G. (Hemorrhagic fever with renal syndrome in the Kirov Region at the present stage). Epidemiology and infectious deseases. Current items 2015; (5): 7–12. (In Russ.).


20. Алешковская Е.С., Чупрунова С.В., Галицина Л.Е., Синицина О.Д. Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом – актуальная природно-очаговая инфекция в Ярославской области. Эпидемиол. инфекц. бол. Актуал. вопр. 2015; (4): 9–12.


Aleshkovskaya E.S., Chuprunova S.V., Galitsina L.E., Sinitsina O.D. (Hemorrhagic fever with renal syndrome is a pressing feral herd infection in the Yaroslavl Region). Epidemiology and infectious deseases. Current items 2015; (4): 9–12. (In Russ.).


21. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Республике Крым и городе федерального значения Севастополе в 2017 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2018. http://82.rospotrebnadzor.ru/s/82/files/documents/ Gosdoklad/148365.pdf


On the state of sanitary and epidemiological registration of the population in the Crimea and the federal city of Sevastopol in 2017: State report). Moscow, 2018. (In Russ.). http://82.rospotrebnadzor.ru/s/82/files/documents/ Gosdoklad/148365.pdf


22. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Республике Крым и городе федерального значения Севастополе в 2019 году: Государственный доклад. М.: Федеральная служба по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, 2020. http://82.rospotrebnadzor.ru/s/82/files/documents/ Gosdoklad/148365.pdf


(On the state of sanitary and epidemiological well-being of the population in the Republic of Crimea and the federal city of Sevastopol in 2019: State report). Moscow, 2020. (In Russ.). http://82.rospotrebnadzor.ru/s/82/files/documents/ Gosdoklad/148365.pdf


23. Бондаренко А.Л., Протасов А.В., Рохин Е.А., Слобожанинова Ю.П. Микст-инфекция: вирусный гепатит А и геморрагическая лихорадка с почечным синдромом. Клиническое наблюдение. Тер. архив 2021; 93(11): 1359–62. DOI: 10.26442/00403660.2021.11.201166.


Bondarenko А.L., Protasov A.V., Rokhin E.A., Slobozhaninova Yu.P. (Mixed infection: viral hepatitis A and hemorrhagic fever with renal syndrome. Case report). Therapeutic Archive 2021; 93(11): 1359–62. (In Russ.). DOI: 10.26442/00403660.2021.11.201166


24. Нафеев А.А., Хайсарова А.Н, Сибаева Э.И., Жукова Е.Ю., Янбекова С.Ю., Зайчикова М.И. Очаг геморрагической лихорадки с почечным синдромом в летнем оздоровительном лагере. Эпидемиол. и инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2016; (2): 73–6.


Nafeev A.A., Khaisarova A.N., Sibaeba E.I., Zhukova E.Yu., Yanbekova S.Yu., Zaichikova M.I. (A focus of hemorrhagic fever with renal syndrome in a summer health camp). Epidemiology and infectious deseases. Current items 2016; (2): 73–6. (In Russ.).


About the Autors


Emine E. Alieva, Еpidemiologist, N.I. Pirogov Saki Military Clinical Sanatorium, Ministry of Defense of Russia, Saki, Russia; emine.arifova@mail.ru; https://orcid.org/0000-0002-0321-7913
Oleg A. Kozlovsky, Cand. Med. Sci., Infectiologist, Associate Professor, Department of Infectious Diseases, S.I. Georgievsky Medical Institute, V.I Vernadsky Crimean Federal University, Simferopol, Russia; sideeffect@mail.ru
Igor E. Fedosov, Head, Department of Anesthesiology and Resuscitation with Intensive Care Units № 1 for the Adult Population, N.A. Semashko Republican Clinical Hospital, Simferopol, Russia; doctorfedosov@mail.ru; https://orcid.org/0000-0003-3337-6170
Anton G. Elster, Infectiologist, Head. Infectious Diseases Department, Simferopol City Clinical Hospital № 7, Simferopol, Russia; elsteranton@mail.ru
Tatyana N. Odinets– Infectious Disease Doctor, Head, Infectious Diseases Department. Simferopol City Clinical Hospital № 7, Simferopol, Russia; odinetstanya@mail.ru
Marina V. Cherni, Head, Infectious Diseases Department, Alushta Central City Hospital, Alushta, Russia; marina.cherni@mail.ru
Natalya S. Gorovenko, Head, Laboratory of Especially Dangerous Infections, Center for Hygiene and Epidemiology in the Republic of Crimea and the Federal City of Sevastopol, Simferopol, Russia; labooi@cge-crimea.ru
Konstantin D. Maliy, Cand. Med. Sci., Associate Professor, Department of Biochemistry, S.I. Georgievsky Medical Institute, V.I. Vernadsky Crimean Federal University, Simferopol, Russia; kdmaly@mail.ru; https://orcid.org/0000-0002-6591-2719
Muniver T. Gafarova, MD, Professor, Department of Infectious Diseases, S.I. Georgievsky Medical Institute, V.I. Vernadsky Crimean Federal University, Simferopol, Russia; muniver@mail.ru; https://orcid.org/0000-0002-4067-5825


Similar Articles


Бионика Медиа