Activity of a salivary antimicrobial peptide fraction in respiratory infectious inflammatory diseases


Arzumanian V.G., Foshina E.P., Vartanova N.O., Malchevskaya M.A., Erofeeva T.V.

I.I. Mechnikov Research Institute for Vaccines and Sera, Moscow, Russia
Objective. To investigate the activity of a salivary antimicrobial peptide (AMP) fraction in relation to the microflora and the severity of respiratory inflammatory infectious diseases (RIIDs).
Subjects and methods. A total of 203 patients with varying severity of RIIDs and 29 healthy volunteers were examined. Smears from the posterior pharyngeal wall and tonsils were used to obtain isolates that were identified by classical physiological and biochemical tests. The activity of the fraction of salivary AMPs was assessed by a method based on their property to disrupt the cytoplasmic membrane.
Results. The activity of a salivary AMP fraction in healthy children was 2.5-fold lower than that in patients with RIIDs and healthy adults. The highest AMP activity occurred in mild RIID and significantly differed from that in healthy volunteers and patients with severe RIID. The number of microbial species detected in the oropharynx correlated with the severity of RIID (r = 0.894) and the activity of AMP (r = 0.809).
Conclusion. Due to its high frequency among healthy people (> 70%) and its high inverse correlation with the severity of RIID (r = -0.985), Enterococcus spp. can be attributed to the resident microbiota of the oropharynx, whereas S. pyogenes was not detected in healthy people at all. S. aureus was 1.5 times more commonly found in children than in adults, with no correlation with the severity of RIID.

Эндогенными антимикробными пептидами (АМП) называют класс молекул иммунной системы, действие которых позволяет предотвратить микробную инвазию [1]. На сегодняшний день известно более 500 эндогенных АМП, участвующих в защите эпителиальных тканей животных и человека [2]. Несмотря на то что АМП являются древнейшим фактором врожденного иммунитета и обнаруживается повсеместно в организме человека, эти соединения начали изучать всего несколько десятилетий назад. АМП называют натуральными антибиотиками, так как они оказывают антимикробное действие на широкий спектр микроорганизмов – вирусы, бактерии, грибы и простейшие. Большинство этих пептидов относятся к катионным белкам, разнообразным по аминокислотной последовательности, вторичной структуре и механизму действия на клетки микроорганизмов, результатом которого является деструкция цитоплазматической мембраны. В настоящее время АМП рассматривают в качестве альтернативы известным антибиотическим и иммуномодулирующим препаратам.

Заболевания, возникающие при попадании патогенов в респираторный тракт, объединены в большую группу респираторных инфекционно-воспалительных заболеваний (РИВЗ). Ротоглотка является одним из первых барьеров на пути патогенных микроорганизмов и в здоровом состоянии заселена многими видами резидентных микробов. Наше предыдущее исследование было посвящено изучению видового состава и антибиотикочувствительности микробиоты, населяющей ротоглотку при РИВЗ: выявлены наиболее часто встречающиеся виды/роды микроорганизмов – Staphylococcus aureus, Enterococcus spp., Streptococcus agalactiae, Neisseria spp. и Streptococcus pyogenes [3]. Одним из важных факторов антимикробной защиты ротоглотки является слюна [4]. В здоровом состоянии у взрослого человека выделятся порядка 0,3–0,4 мл слюны в минуту или 2–2,5 л/сут. Механизмы защиты ротоглотки не всегда срабатывают, что может быть обусловлено как факторами окружающей среды, так и состоянием иммунитета. В слюне обнаружено порядка 45 идентифицируемых антимикробных генных продукта слизистой оболочки, слюнных желез и нейтрофилов. Особо можно отметить крупные семейства антимикробных пептидов, такие как дефензины (α- и β-) и гистатины [5, 6]. В табл. 1 представлены данные, касающиеся спектра АМП, обнаруженных в слюне человека, а также их свойств (молекулярных масс, химических особенностей, концентраций) [7–17] и изменения уровня экспрессии при РИВЗ в соответствующих локусах [18–33]. Видно, что концентрации АМП в слюне варьируют в широком диапазоне от 10-2 (адреномедуллин) до 105 (гистатины) нг/мл. К настоящему времени накоплен значительный клинический материал о вза­имосвязи между синтезом АМП и многими заболеваниями, в том числе РИВЗ. Из данных табл. 1 следует, что нет общей закономерности в изменении уровней АМП при РИВЗ, они могут повышаться или понижаться в зависимости от вида АМП и нозологической формы заболевания. Очевидно также, что в слюне, как и в прочих секретах и локусах, действует весь спектр АМП одновременно, поэтому логичным подходом к определению роли АМП при инфекционно-воспалительных заболеваниях является оценка их совокупного действия на референс-культуры микроорганизмов [34, 35]. В этой связи целью настоящего исследования явилось изучение совокупной активности АМП фракции слюны во взаимосвязи с соответствующей локусу микрофлорой и клинической картиной, что даст возможность оценить роль АМП в иммунной защите ротоглотки при РИВЗ.

Материалы и методы

В исследование включены 203 пациента в возрасте от 2 до 64 лет с РИВЗ: хронический ринит/хронический ринофарингит (ХРФ), аллергический ринит (АР), острый назофарингит (ОНФ), болезнь аденоидов/миндалин (БАМ), хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ), бронхиальная астма (БА), ангина/острый тонзиллит (АТ) с различной степенью тяжести, соответствующей разработанной нами шкале (табл. 2).

Контрольную группу составили 29 добровольцев без симптомов РИВЗ в возрасте от 5 до 70 лет.

Для микробиологических исследований мазков из ротоглотки группы обследованных делили следующим образом: подгруппа 1 – дети (контроль; п = 11), подгруппа 2 – дети с РИВЗ (n = 143), подгруппа 3 – взрослые (контроль; n = 18) и подгруппа 4 – взрослые с РИВЗ (n = 60).

Иммунохимические исследования слюны проводили среди детей подгрупп 1 (n = 11) и 2 (n = 13), а также взрослых подгрупп 3 (n = 18) и 4 (n = 7).

Критерии включения:

  • – наличие диагноза, поставленного впервые или имевшегося в анамнезе;
  • – информированное согласие пациента или его родителей на участие в исследовании;
  • – отсутствие тяжелых психических и соматичес­ких заболеваний.

Критерии исключения:

  • – участие в иных медицинских исследованиях;
  • – прием иммунотропных препаратов.

Мазки производили стерильными ватными тампонами («Nuova Aptaca», Италия) с задней стенки глотки и поверхности миндалин, тампоны помещали в транспортную среду Эймса и доставляли в лабораторию, где проводили посевы на чашки с селективными средами. Подробное описание приведено в нашем предыдущем исследовании [3].

Совокупную активность АМП оценивали, используя ранее разработанный метод, в основу которого положено свойство АМП нарушать целостность цитоплазматической мембраны микроорганизмов [35]. Метод модифицирован путем использования в качестве порообразующих агентов низкомолекулярных фракций слюны, а также путем исключения стадии микроскопии и введения стадии спектрофотометрии, что значительно упростило методику и повысило ее точность.

Слюну собирали в пластиковые контейнеры и замораживали порциями при -25 °С. Перед проведением анализа слюну размораживали и отделяли от макрочастиц путем центрифугирования при 16 000 об/мин в течение 5 мин. Получение низкомолекулярной фракции проводили путем центрифугирования при 16 000 об/мин в течение 10 мин с использованием фильтрующих насадок «Amicon ultra» («Merсk», Германия) с размером пор 100 кДа.

В качестве модельного микроорганизма использовали дрожжи Candida albicans № 927 из коллекции Лаборатории физиологии грибов и бактерий ФГБНУ «НИИВС им. И.И. Мечникова». Для приготовления клеточной суспензии использовали 20-часовую культуру Candida albicans № 927. Аликвоты образцов слюны соединяли с суспензией клеток дрожжей и инкубировали при +32 °С на шейкере в течение 2 ч, после чего центрифугировали в течение 5 мин со скоростью 16 000 об/мин. Полученный осадок инкубировали с 300 мкл красителя бромкрезолового пурпурного, pH 4,6 в тех же условиях, клетки отделяли центрифугированием в течение 5 мин со скоростью 16 000 об/мин. Супернатант разбавляли калий-фосфатным буфером (pH 4,6) в 50 раз и измеряли оптическую плотность на спектрофотометре «Genesys 10S UV-Vis» при длине волны 440 нм. Активность АМП выражали как процент красителя, поглощенного убитыми клетками тест-культуры C. albicans, по следующей формуле:

ОПконтр. – ОП в контрольном варианте с физраствором вместо слюны;

ОПопыт. – ОП в варианте со слюной.

Для определения концентрации секреторного IgA (sIgA) в слюне использовали набор «IgA секреторный-ИФА-БЕСТ» («Вектор-БЕСТ», Рос­сия). Исследуемые образцы, согласно инструк­ции, использовали в разведении 1:2000. Об уровне IgG-антител судили по величине оптической плотности (ОП), которую измеряли на спектрофотометре «ЭФОС 9305» (Россия) при длине волны 450 нм через 2–3 мин после внесения стоп-реагента.

Для определения типа распределения полученных выборок использовали такие методы первичной статистической обработки, как среднее и медиана. При обработке малых выборок (менее 16 объектов, при котором t-распределение начинает существенно отличаться от нормального) использовали U-тест Манна–Уитни для двух независимых выборок. Для исследования взаимосвязи между двумя независимыми выборками применяли корреляционный анализ.

Результаты

В нашем предыдущем исследовании был подробно рассмотрена структура нозологических форм РИВЗ. Однако при разбивке на взрослую и детскую группы выяснилось, что в детской отсутствовали пациенты с ХОБЛ, а во взрослой – с ОНР и АТ (рис. 1).

Распределение пациентов по тяжести течения РИВЗ представлено на рис. 2: видно, что среди детей процент пациентов со средней степенью тяжести РИВЗ (2 балла) значительно выше, чем среди взрослых.

Данные об активности АМП фракции слюны, рассчитанные по вышеуказанной формуле, представлены на рис. 3. В подгруппах 1 и 3 отмечена меньшая активность АМП, чем в подгруппах 2 и 4. Установлено, что показатели активности АМП у пациентов с РИВЗ были в 1,1–3,0 раза выше, чем у здоровых участников исследования.

Особенно четко видно различие у детей: в подгруппе 2 (медиана 15,9%) наблюдали 3-кратное увеличение активности АМП по сравнению с ее значениями в подгруппе 1 (медиана 5,9%). Не такая ясная ситуация наблюдалась среди взрослых. Вследствие небольшой выборки и большого разброса показателей в подгруппе 4 (n = 7) превышение активности АМП было не таким значительным. Различия значений в подгруппе 1 по сравнению с подгруппами 2 и 3, оцененные по критерию Манна–Уитни, значимы (p ≤ 0,01), а по сравнению с подгруппой 4 значимы в интервале 0,01 ≤ p ≤ 0,05; различия значений между подгруппами 2 и 3, а также 2 и 4 незначимы (p > 0,05). При сравнении медиан значений активности АМП и тяжести течения РИВЗ по всем указанным выборкам отмечена слабая положительная корреляция (табл. 3).

Расположив значения тяжести течения РИВЗ по возрастанию баллов от 0 до 3 против соответствующих значений активности АМП, получим гистограмму, представленную на рис. 4. Наибольшее различие имело место между 1-й степенью тяжести и остальными, достоверность чего подтверждена статистически (p ≤ 0,01), тогда как активность АМП при 2-й и 3-й степени тяжести достоверно не отличалась от контрольных показателей (p > 0,05). Объяснить этот факт можно тем, что легкая степень РИВЗ связана со способностью организма вырабатывать достаточное количество активных АМП, тогда как осложнение течения РИВЗ обусловлено неспособностью организма адекватно реагировать на инфекцию. В связи с такой неоднозначной зависимостью между тяжестью течения РИВЗ и активностью АМП слюны корреляция между этими показателями по всей выборке в целом совсем низкая – r = 0,273.

Обсуждение

В связи с защитой слизистых оболочек влагалища в литературе упоминаются следующие пептиды: лактоферрин, кальпротектин, лизоцим, секреторный ингибитор лейкопротеазы, кателицидины и дефензины. В более раннем нашем исследовании была изучена вза­имо­связь между активностью АМП влагалища и наличием бактериального вагиноза и кандидозного вульвовагинита [35]. Мы использовали метод, основанный на сборе вагинального отделяемого и взаимодействии его с тест-культурами C. albicans в случае кандидозного вульвовагинита и E. coli – в случае бактериального вагиноза [34] в собственной модификации. При обоих патологических состояниях установлена обратная корреляция высокой степени между совокупной активностью АМП и тяжестью течения заболевания. Очевидно, что совокупная активность АМП зависит от изучаемого локуса и нозологии.

Помимо АМП прямой антимикробной активностью обладают также секреторные иммуноглобулины [36]. В слюне человека преобладающим классом является sIgA [37]. В этой связи было целесообразно определить уровни этих антител в нефракционированной слюне (см. табл. 3). Полученные результаты согласуются с данными A.J. Macpherson и соавт. [38], которые показали, что уровень sIgA в слюне с возрастом повышается. Однако значения sIgA в изученных выборках достоверно не различались (p > 0,05), а сколько-нибудь значимой корреляции медиан показателя в подгруппах с тяжестью течения РИВЗ/активностью АМП не обнаружено. В литературе есть данные о прогностической значимости этого показателя в оценке состояния здоровья населения при массовых обследованиях [39]. Авторы указывают, что снижение sIgА может свидетельствовать о недостаточности функции местного иммунитета, а его повышенный уровень – о дисбалансе в иммунной системе. По полученным нами данным такого вывода сделать нельзя.

Количество видов микроорганизмов, обнаруживаемых в мазках из ротоглотки у одного человека, – видовое разнообразие – варьировало среди детей от 1 до 4 (подгруппа 1) и от 1 до 6 (подгруппа 2), среди взрослых в подгруппах 3 и 4 – также от 1 до 5. Медианы этих показателей представлены в табл. 3. Важно отметить, что видовое разнообразие имело положительную корреляцию высокой силы с тяжестью течения РИВЗ и активностью АМП слюны, но практически не было связано с уровнем sIgА (r = 0,364).

Можно попытаться привести такие разные показатели антимикробной защиты, как активность АМП и уровни sIgА, к общему знаменателю и вычислить их суммарную активность. Для этого выразим каждое значение показателей из табл. 3 в процентах, принимая за 100% наименьший показатель в столбце. После этого сложим полученные числа построчно и получим следующие значения показателей «интегральной» защиты: подгруппа 1 – 202%, подгруппа 2 – 370%, подгруппа 3 – 391% и подгруппа 4 – 369%. Видно, что минимальная антимикробная защита слюны имеет место у здоровых детей, а максимальная – у здоровых взрослых.

Для оценки взаимосвязи между наиболее часто встре­чающимися видами микроорганизмов, тяжестью течения РИВЗ и активностью АМП слюны мы распо­ложили виды в порядке убывания частоты встре­чаемости в подгруппе 1. Оказалось, что частота встре­чаемости одних видов (Enterococcus spp., S. aureus и S. sanguis) имела отрицательную и в основном высокую корреляцию с тяжестью течения РИВЗ и активностью АМП, тогда как остальные виды (S. agalactiae, Neisseria spp. и S. pyogenes) – положительную и в половине случаев сильную корре­ляцию с указанными показателями. Видно, что с тяжестью течения РИВЗ наиболее сильно связана встречаемость S. pyogenes, что свидетельствует о наи­более выраженной условной патогенности этих бакте­рий, тогда как наличие Enterococcus spp., напротив, характерно для здоровых носителей и в гораздо меньшей степени присуще пациентам с РИВЗ. С активностью АМП наиболее сильно коррелировала встречаемость S. agalactiae и Neisseria spp., а значительная обратная взаимосвязь наблюдалась с встречаемостью видов S. aureus и S. sanguis. Важно отметить, что золотистый стафилококк встречался у детей в 1,5 раза чаще, чем у взрослых.

Выводы

  1. Значения совокупной активности АМП слюны у здоровых детей были достоверно ниже, чем у детей и взрослых с РИВЗ, а также здоровых взрослых.
  2. Наибольшая активность АМП слюны имела место при легком течении РИВЗ (медиана 26%) и достоверно отличалась от таковой у здоровых добровольцев (медиана 11%) и пациентов со среднетяжелой и тяжелой формами РИВЗ (медианы 11 и 15%) (p ≤ 0,01).
  3. Уровни sIgA (медианы) у детей были несколько ниже, чем у взрослых, однако достоверно не различались (p > 0,05), а значимой корреляции между медианами показателя в подгруппах и тяжестью течения РИВЗ/активностью АМП не обнаружено.
  4. Разнообразие видов микроорганизмов, обнаруженных в ротоглотке (медианы), имело положительную корреляцию высокой силы с тяжестью течения РИВЗ (r = 0,894) и активностью АМП слюны (r = 0,809), но не было связано с уровнем sIgА (r = 0,364).
  5. Судя по значительно бóльшей частоте встречаемости среди здоровых людей, чем среди пациентов с РИВЗ, а также высокой обратной корреляции между встречаемостью и тяжестью течения РИВЗ (r = -0,985), бактерии рода Enterococcus spp. являются нормальными обитателями ротоглотки. Вид S. pyogenes, исходя из прямо противоположных показателей, напротив, можно отнести к наиболее оппортунистическим видам, выделяемым при РИВЗ.
  6. Вид S. aureus в 1,5 раза чаще обнаруживали у детей, чем у взрослых, причем значимой корреляции между тяжестью течения РИВЗ и встречаемостью S. aureus не обнаружено (r = - 0,243).


Literature


  1. Khurshid Z., Naseem M., Sheikh Z., Najeeb S. , Shahab S., Zafar M.S. Oral antimicrobial peptides: Types and role in the oral cavity. Saudi Pharm. J. 2016; 24(5): 515–24.
  2. Zasloff M. Antimicrobial peptides of multicellular organisms. Nature. 2002; 415(6870): 389–95.
  3. Arzumanyan V.G., Vartashova N.O., Malchevskaya M.A., Erofeeva T.V., Foshina E.P., Magarshak O.O., Ozhovan I.M., Poddubikov A.V. [Oropharyngeal microbiota in respiratory infectious inflammatory diseases]. Èpidemiologiâ i infekcionnye bolezni. Аktual’nye voprosy 2017; (2): 22–8. (In Russ.).
  4. Amerongen A., Veerman E. Saliva – the defender of the oral cavity. Oral Dis. 2002; 8(1): 12–22.
  5. Brogden K.A. Antimicrobial peptides: pore formers or metabolic inhibitors in bacteria? Nat. Rev. Microbiol. 2005; 3(3): 238–50.
  6. Harris F., Dennison S.R., Phoenix D.A. Anionic antimicrobial peptides from eukaryotic organisms. Curr. Protein Pept. Sci. 2009; 10(6): 585–606.
  7. Berlutti F., Pilloni A., Pietropaoli M., Polimeni A., Valenti P. Lacroferrin and oral diseases: current status and perspective in periodontitis. Annali di Stomatologia 2011; II(3–4): 10–8.
  8. Sweet S. P., Denbury A. N., Challacombe S. J. Salivary calprotectin levels are raised in patients with oral candidiasis or Sjögren’s syndrome but decreased by HIV infection. Oral Microbiol. Immunol. 2001; 16: 119–23.
  9. Human Lipocalin-2/NGAL Immunoassay Quantikine ELISA. Catalog Number DLCN20. For the quantitative determination of human Lipocalin-2 concentrations in cell culture supernates, serum, plasma, saliva, and urine. https://www.rndsystems.com/products/human-lipocalin-2-ngal-quantikine-elisa-kit_dlcn20
  10. Davidopoulou S., Theodoridis H., Nazer K., Kessopoulou E. Menexes G., Kalfas S. Salivary concentration of the antimicrobial peptide LL-37 in patients with oral lichen planus. J. Oral Microbiol. 2014; (6): 26156. DOI:10.3390/biom7040080
  11. Jenzano J.W., Hogan S.L., Lundblad R. L. Factors influencing measurement of human salivary lysozyme in lysoplate and turbidimetric assays. J. Clin. Microbiol. 1986;24(6): 963–7.
  12. Wahl S.M., McNeely T.B., Janoff E.N., Shugars D., Worley P., Tucker C., Orenstein J.M. Secretory leukocyte protease inhibitor (SLPI) in mucosal fluids inhibits HIV-I. Oral Dis. 1997; 3(l): 64–9.
  13. Giusti L., Sernissi F., Donadio E., Ciregia F., Giacomelli C., Giannaccini G., Mazzoni M.R., Lucacchini A, Bazzichi L. Salivary psoriasin (S100A7) correlates with diffusion capacity of carbon monoxide in a large cohort of systemic sclerosis patients. J. Translational Medicine 2016; 14: 262–7.
  14. Arnold J., Sangwaiya A., Manglam V., Geoghegan F., Thursz M., Busbridge M. Presence of hepcidin-25 in biological fluids: bile, ascitic and pleural fluids. World J. Gastroenterol. 2010; 16(17): 2129–33.
  15. Kapas S., Pahal K., Cruchley A.T., Hagi-Pavli E., Hinson J.P. Expression of adrenomedullin and its receptors in human salivary tissues. J. Dent. Res. 2004; 83(4): 333–7.
  16. Küçükkolbaşı H., Küçükkolbaşı S., Dursun R., Ayyıldız F., Kara H. Determination of defensing HNP-1 in human saliva of patients with oral mucosal diseases. J. Immunoassay and Immunochemistry 2011; 32(4): 284–95.
  17. Khurshid Z., Najeeb S., Mali M., Faraz S.M., Raza S.Q., Zohaib S., Sefat F., Sohail M. Z. Histatin peptides: Pharmacological functions and its applications in dentistry. Saudi Pharmaceutical Journal 2017; 25(1): 25–31.
  18. Psaltis A.J., Bruhn M.A., Ooi E.H., Tan L.W., Wormald P.J. Nasal mucosa expression of lactoferrin in patients with chronic rhinosinusitis. See comment in PubMed Commons belowLaryngoscope 2007; 117(11): 2030–5.
  19. Tieu D.D., Peters A.T., Carter R.G., Suh L., Conley D.B., Chandra R., Norton J., Grammer L.C., Harris K.E., Kato A., Kern R.C., Schleimer R.P. Evidence for diminished levels of epithelial psoriasin and calprotectin in chronic rhinosinusitis. J. Allergy Clin. Immunol. 2010; 125(3): 667–75.
  20. Bogefors J., Kvarnhammar A.M., Millrud C.R., Georén S.K., Cardell L.O. LEAP-2, LL-37 and RNase7 in tonsillar tissue: downregulated expression in seasonal allergic rhinitis. Pathog. Dis. 2014; 72(1): 55–60.
  21. Saakian Y.V., Elizarova V.M., Vinogradova T.V., Pampura A.N. [The value of antimicrobial peptides in the development of diseases of the oral cavity in children with bronchial asthma]. Rossiiskii stomatologicheskii zhurnal 2015; 19(1): 52–6. (In Russ.).
  22. Wang Y., Jia M., Yan X., Cao L., Barnes P.J., Adcock I.M., Huang M., Yao X. Increased neutrophil gelatinase-associated lipocalin (NGAL) promotes airway remodelling in chronic obstructive pulmonary disease. Clin. Sci. (London) 2017; 131(11): 1147–59.
  23. Bachorzewska-Gajewska H., Tomaszuk-Kazberuk A., Jarocka I., Mlodawska E., Lopatowska P., Zalewska-Ada-miec M. Does neutrophil gelatinase-asociated lipocalin have prognostic value in patients with stable angina undergoing elective PCI? A 3-year follow-up study. Kidney Blood Press. Res. 2013; 37(4–5): 280–5.
  24. Jiao D., Wong C., Sin-Man Tsang M. , Miu-Ting Chu I., Liu D. Activation of Eosinophils Interacting with Bronchial Epithelial Cells by Antimicrobial Peptide LL-37: Implications in Allergic Asthma. Scientific Reports 2017; (1): 1848–60.
  25. Ball S.L., Siou G.P., Wilson J.A., Howard A., Hirst B.H., Hall J. Expression and immunolocalisation of antimicrobial peptides within human palatine tonsils. J. Laryngol.Otol. 2007; 121(10): 973–8.
  26. Fryksmark U., Jannert M., Ohlsson K., Tegner H., Wihl J.A. Secretory leukocyte protease inhibitor in normal, allergic and virus induced nasal secretions. Rhinology 1989; 27(2):97–103.
  27. Raundhal M., Morse C., Khare A., Oriss T.B., Milosevic J., Trudeau J., Huff R., Pilewski J., Holguin F., Kolls J., Wenzel S., Ray P., Ray A. High IFN-γ and low SLPI mark severe asthma in mice and humans. J. Clin. Invest. 2015; 125(8): 3037–50.
  28. Niu R.C., Luo B.L., Feng J.T., Wang L.J., Hu C.P. Expression of secretory leukocyte proteinase inhibitor in the bronchi and lung tissues of chronic obstructive pulmonary disease rat models and the regulatory mechanism by transforming growth factor beta(1). Zhonghua Jie He He Hu Xi Za Zhi 2007; 30(11): 851–6.
  29. Fujikura T., Okubo K. Adrenomedullin level in the nasal discharge from allergic rhinitis cohort. Peptides 2011; 32(2): 368–73.
  30. Kucukosmanoglu E., Keskin O., Karcin M., Cekmen M., Balat A. Plasma adrenomedullin levels in children with asthma: any relation with atopic dermatitis? Allergol. Immunopathol. (Madr.). 2012; 40(4): 215–9.
  31. Ishikawa T., Hatakeyama K., Imamura T., Ito K., Hara S., Date H., Shibata Y., Hikichi Y., Asada Y., Eto T. Increased adrenomedullin immunoreactivity and mRNA expression in coronary plaques obtained from patients with unstable angina. Heart 2004; 90(10): 1206–10.
  32. The central role of adrenomedullin in host defense. https://www.researchgate.net/publication/7013367_The_central_role_of_ adrenomedullin_in_host_defense.
  33. Baines K.J., Wright T.K., Simpson J.L., McDonald V.M., Wood L.G., Parsons K.S. Airway β-Defensin-1 Protein Is Elevated in COPD and Severe Asthma. Mediators Inflamm. 2015; 9859: 1–8. DOI:10.1155/2015/407271.
  34. Valore E.V., Wiley D.J., Ganz T. Reversible deficiency of antimicrobial polypeptides in bacterial vaginosis. Infect. Immun. 2006; 74(10): 5693–702.
  35. Arzumanian V., Malbakhova E., Vartanova N. The new about congenital antimicrobial defense of some epithelial tissues – vaginal mucosa and hair. In: A search for antibacterial agents, 2012. ISBN: 978-953-51-0724-8. Chapter 8: 125–46.
  36. Arzumanian V.G., Malbakhova E., Foshina E.P., Vartanova N.O., Artemʹeva T.A., Butovchenko L.M., Vartanova N.O., Shmeleva O.A. [Method of estimation of overall antimicrobial peptides activity as marker of status of different epithelial tissues]. Patent RF № 2602298, 2015. (In Russ.).
  37. Kavishwar A., Shukla P. K. Candidacidal activity of a monoclonal antibody that binds with glycosyl moieties of proteins of Candida albicans. Medical Mycology 2006; 44(2): 159–67.
  38. Macpherson A.J., McCoy K.D., Johansen F.-E., Brandtzaeg P. The immune geography of IgA induction and function. Immunology 2008; (1): 11–22.
  39. Malyshev M.Ye., Lobeyko V.V., Iordanishvili A.K. [Immune parameters of saliva in persons of different age residing in St. Petersburg and Leningrad Region]. Uspekhi gerontologii 2015; (2): 99–103. (In Russ.).


About the Autors


For correspondence:
Prof. Vera G. Arzumanian, BD, Head, Laboratory of Physiology of Fungi and Bacteria, I.I. Mechnikov Research Institute for Vaccines and Sera
Address: 5a, Maly Kazenny Lane, Moscow 105064, Russia
Telephone: +7(495) 917-09-03
E-mail: veraar@mail.ru
Information about the authors:
Elena P. Foshina, Cand. Med. Sci., Head, Laboratory of Immunological Research Methods, I.I. Mechnikov Research Institute for Vaccines and Sera, Moscow, Russia;
e-mail: kit6@yandex.ru
Nune O. Vartanova, Cand. Biol. Sci., Senior Researcher, Laboratory of Opportunistic Bacteria, I.I. Mechnikov Research Institute for Vaccines and Sera, Moscow, Russia; e-mail: nune4me@mail.ru
Mariya A. Malchevskaya, Diploma Student, Laboratory of Physiology of Fungi and Bacteria, I.I. Mechnikov Research Institute for Vaccines and Sera, Moscow, Russia;
e-mail: mmalchevskaya@gmail.com
Taisiya V. Erofeeva, Junior Researcher, Laboratory of Physiology of Fungi and Bacteria, I.I. Mechnikov Research Institute for Vaccines and Sera, Moscow, Russia; e-mail: taisiyap@yandex.ru


Similar Articles


Бионика Медиа