Herpesvirus infection in patients with juvenile arthritis


Soldatova E.Yu., Melekhina E.V., Gorelov A.V.

Central Research Institute of Epidemiology, Russian Federal Service for Supervision of Consumer Rights Protection and Human Welfare, Moscow
Based on the data available in the Russian and foreign literature over the last 10 years, the authors consider the role of herpesvirus infection as trigger and/or pathogenetic factors leading to the development of autoimmune processes, juvenile arthritis (JA) in particular. Herpesviruses are pantropic and widely distributed in the human population. The spectrum of the clinical manifestations of herpesvirus infection is very diverse in children: it depends on the localization of the pathological process, its extent, the patient’s immune system, and the antigenic type of the virus. According to the present-day concepts, JA is a heterogeneous group of chronic joint diseases with different etiopathogenesis and immunogenetic origin, nosology, and controversial prognosis. JA includes juvenile rheumatoid arthritis (juvenile idiopathic arthritis) and juvenile spondyloarthritis. The prevalence of JA in different countries ranges from 0.05 to 0.6% and its incidence does from 2 to 19 cases per 100,000 children under 16 years of age. The review discusses the influence of different endogenous and environmental factors on the development and progression of rheumatoid arthritis and the role of the genetically determined and secondary defects in immunoregulatory mechanisms, which lead to rapid transformation of an acute physiological inflammatory response to chronic progressive inflammation. It describes the current theories explaining the development of pathological autoimmune processes, such as the theory of genetic predisposition, the theory of immune dysregulation, the theory of network regulation, and the infection theory (including the relationship to the course of herpesvirus infection). The types of viral and bacterial infections and their impact on the development of severe clinical forms of JA are considered. The paper presents the modern concepts of pharmacotherapy for arthritis, juvenile idiopathic arthritis in particular. It describes the possible effects of biological agents on the reactivation of latent viral infections. Whether antiviral drugs can be used in children and should be administered in different stages and clinical types of JA is discussed.

Сохраняющийся на протяжении многих лет интерес исследователей и практикующих врачей различных специальностей к герпесвирусным инфекциям (ГВИ) не является случайным. Герпесвирусы пантропны и широко распространены в человеческой популяции.

Все герпесвирусы используют стратегию длительного латентного существования в организме хозяина, которая периодически прерывается литической реактивацией части латентных клеток с образованием свободных вирионов, передающихся здоровым людям. Кроме того, высокая мутационная активность вирусного генома способствует ускользанию вируса от иммунологического контроля, индуцируя латентную, острую и хроническую формы инфекции, ухудшающие качество жизни пациента [1–2].

По данным вирусологических, серологических исследований, результатам исследований методом полимеразной цепной реакции (ПЦР), к исходу 3-го года жизни более 80% детей инфицированы различными видами герпесвирусов. У школьников частота инфицирования составляет около 90%, у взрослых – более 90% [3, 4]. По данным ВОЗ, до 95% населения планеты инфицированы одним или несколькими штаммами вируса. В настоящее время выделено 8 патогенных для человека вирусов семейства Herpesviridae: вирус простого герпеса 1-го (ВПГ-1) и 2-го (ВПГ-2) типов, Varicella-Zoster (VZV), цитомегаловирус (ЦМВ, CMV), вирус Эпштейна–Барр (ВЭБ, EBV), вирус герпеса человека 6-го (ВГЧ-6), 7-го (ВГЧ-7) и 8-го (ВГЧ-8) типов.

У детей спектр клинических проявлений ГВИ весьма разнообразен: он зависит от локализации патологического процесса, его распространенности, состояния иммунной системы больного и антигенного типа вируса [1, 4–10].

Верификация ГВИ в настоящее время основывается на прямых и непрямых методах лабораторной диагностики: детекции ДНК вирусов методом ПЦР и/или их антигенов в реакции иммунофлюоресценции; выявлении специфических IgG, IgМ, IgA с определением авидности IgG-антител в иммуноферментном анализе (ИФА), а также наличия IgМ и IgG к отдельным маркерным белкам герпесвирусов в иммуноблоте или иммунопреципитации. Культуральный метод (с изоляцией вируса на чувствительных клетках in vitro и последующей идентификацией на специальном оборудовании) используется в исследовательских лабораториях.

ПЦР является «золотым стандартом» диагностики ГВИ, его используют для детекции всех восьми типов герпесвирусов, патогенных для человека. Недостатком классической ПЦР являются ложноположительные реакции из-за загрязнения посторонней ДНК или субоптимального праймер-матричного соотношения. В настоящее время существует метод, лишенный вышеперечисленных недостатков, – это метод ПЦР в реальном времени (REAL–Time PCR). Сущность метода заключается в исследовании накоп­ления продуктов амплификации с помощью специального прибора, особенностью которого является возможность детектировать процесс флюоресценции в каждом цикле амплификации без последующего электрофореза, что позволяет максимально снизить риск контаминации продуктами ПЦР и уменьшить число ложноположительных результатов. Таким образом, метод REAL–Time PCR, в отличие от классической ПЦР, позволяет количественно определить отношение ДНК к РНК инфекционных агентов в исследуемом материале [5, 11]. До настоящего времени не достигнута стандартизация метода, в разных лабораториях используют праймеры на различные регионы вирусного генома и разные протоколы исследования. Существует мнение, что цельная кровь является наиболее подходящим биологическим материалом для диагностики активной ГВИ, тогда как выявление вирусной ДНК в других биологических субстратах может свидетельствовать о латентной инфекции. Поэтому наиболее значимой диагностической ценностью обладает выявление генома герпесвирусов в крови, в то время как выделение антигена вирусов в слюне и моче регистрируется и у здоровых людей. Данная точка зрения не может рассматриваться однозначно, поскольку выявление ДНК вируса и в других субстратах (не в крови) не исключает медленного течения инфекции, в результате которого клиническая манифестация поражения того или иного органа может проявиться спустя достаточно продолжительное время. В связи с этим любая идентификация вируса, независимо от субстрата, должна обязательно быть дополнена серологическим исследованием [11, 12].

Метод ИФА используется наиболее часто и позволяет установить стадию инфекции. Он имеет большое значение с учетом того, что выделение вируса непостоянно и зависит от типа вируса, формы заболевания и реактивности организма, в то время как наличие антител в крови остается пожизненно. Метод ИФА основан на обнаружении в венозной крови пациентов антител иммуноглобулинов класса М и G (IgM и IgG). При «свежем инфицировании» вначале появляются IgM, достигая максимума к двум месяцам, затем происходит снижение на фоне появления и увеличения IgG. При рецидиве инфекции (реактивации) возможно появление IgM на фоне увеличения титра IgG. Определение только антител с подсчетом их титров в сыворотке крови в момент забора не является основанием для установления диагноза активного процесса. Недостатком ИФА является то, что в условиях угнетения иммунного ответа (что имеет место у больных системными, аутоиммунными заболеваниями, а также у пациентов, получающих иммуносупрессивную терапию) антителогенез может быть нарушен. Также чем меньше возраст ребенка, тем ниже титры антител по данным ИФА. Кроме того, нельзя не учитывать, что некоторые ГВИ (в частности, ЦМВ и ВЭБ) относятся к инфекциям с нетипичной динамикой антителообразования, когда наличие IgМ не является достоверным и достаточным признаком для дифференциации стадии заболевания [11]. Возможно также выявление перекрестно реагирующих антител к другим ДНК-вирусам. Для установления точного момента инфицирования и разграничения первичной реинфекции и реактивации инфекционного процесса используют тест на определение авидности IgG-антител. Уровень авидности пропорционален дозе и природе антигена, а также индивидуальному уровню соматических мутаций. Низкие дозы антигена приводят к более быстрому возрастанию авидности, а высокие – к более медленному. Наличие высокоавидных антител IgG говорит о вторичном иммунном ответе в случае реинфекции или реактивации, также они могут определяться в более низких титрах при латентной фазе процесса [4, 12].

Все герпесвирусы являются ДНК-содержащими, сходны по морфологии, типу нуклеиновой кислоты, способу репродукции в ядрах инфицированных клеток. Так, β-герпесвирусы (ЦМВ, ВГЧ-6 и ВГЧ-7) отличаются выраженным цитопатическим эффектом, длительным циклом репликации. В то же время вирус может приводить к подавлению эффекторных функций (например, экспрессии цитокинов) и апоптозу инфицированных клеток у лиц с ослабленным иммунитетом. В свою очередь γ-герпесвирусы, включая ВЭБ, характеризуются тропизмом к В- и Т-лимфоцитам, лимфоидным клеткам, в которых они способны размножаться и длительно персистировать. ВПГ-1 нарушает механизмы, связанные с презентацией антигена Т-лимфоцитам, поэтому последние не распознают инфицированные клетки как чужеродные, что позволяет «избегать» влияния на них СD8+-лимфоцитов, и патологический процесс приобретает вялотекущий характер. В отличие от последних ВЭБ не блокирует экспрессию главного комплекса гистосовместимости (англ. major histocompatibility complex – MHC) I класса. Его мишенями являются В-лимфоциты. Последние, трансформированные ВЭБ, экспрессируют большее число белков HLA I класса по сравнению с неинфицированными клетками, что защищает клетки-мишени, пораженные вирусом, от лизиса НК-клетками (натуральными киллерами) и приводит к персистированию инфекции, возможности формирования длительной иммуносупрессии. С другой стороны, персистирование ВЭБ стимулирует выработку специфических анти-ЕВV-антител В-лимфоцитами, что в условиях недостаточности клеточного звена иммунного ответа может способствовать (в силу гомологичности белковых компонентов ЕВV с таковыми HLA I класса) активации аутоиммунных процессов. Это позволяет предположить, что ГВИ служит не только провоцирующим фактором развития дебюта ювенильного идиопатического артрита (ЮИА), но и может являться одним из патогенетических звеньев развития патологичес­кого процесса [13, 14].

В отечественной и зарубежной литературе активно обсуждается роль ГВИ в формировании соматической патологии [15–23], в том числе как триггерного и/или патогенетического фактора, приводящего к развитию аутоиммунных процессов [14, 24–28].

Возбудители инфекций рассматриваются как возможные этиологические факторы таких аутоиммунных заболеваний, как системная красная волчанка (СКВ), ревматоидный артрит (РА), рассеянный склероз (РС), синдром Шегрена, сахарный диабет 1-го типа (СД1). Описано несколько механизмов, благодаря которым инфекционные агенты могут приводить к развитию аутоиммунного процесса: поликлональная активация В-лимфоцитов, дефицит CD8+-лимфоцитов, молекулярная мимикрия, модификация клеточных антигенов, активация суперантигена, адъювантный эффект [13]. По данным зарубежной литературы, наиболее изучена взаимосвязь аутоиммунных реакций с γ-герпесвирусами, в частности, с ВЭБ и ЦМВ, поскольку данные вирусы характеризуются тропизмом к лимфоидным клеткам (Т- и В-лимфоцитам). Исследования, связанные с изучением серологических показателей и/или вирусной нагрузки, также указывают на потенциальную роль этих вирусов в развитии аутоиммунных заболеваний, включая РА [29–30], СКВ [31], РС [32], СД1 [30].

Наиболее убедительной моделью развития аутоагрессии в настоящее время является гипотеза молекулярной мимикрии, появившаяся около 20 лет назад. Молекулярная мимикрия может инициировать аутоиммунизацию в результате развития перекрестной иммунной реакции при структурном сходстве антигенных детерминант вируса и хозяина либо в результате модификации антигенов тканей организма (см.таблицу).

Однако все больше появляется свидетельств в пользу того, что одной лишь молекулярной мимикрии недостаточно для развития аутоиммунного процесса. Широко распространено мнение о том, что суперантигены вносят значительный вклад в развитие аутоиммунитета. Суперантигены представляют собой группу патогенных бактериальных и вирусных белков, которые способны активировать большое количество Т- и В-лимфоцитов, независимо от антигенной специфичности этих клеток. Отличительной особенностью суперантигенов является их способность активировать лимфоциты без необходимой предварительной презентации на поверхности антигенпрезентирующих клеток (АПК). При этом суперантиген, минуя этот необходимый для специфического распознавания этап, способен одновременно связывать молекулы MHC II класса на поверхности АПК и фрагмент вариабельной части β-цепи Т-клеточного распознающего рецептора на поверхности Т-клетки, имитируя таким образом узнавание антигена Т-клеточным рецептором. В результате происходит активация поликлональных Т-лимфоцитов с массивным высвобождением цитокинов, участвующих в воспалительных процессах, связанных с различными заболеваниями, такими как РА, СД1, РС, СКВ и др.

Поэтому в последние десятилетия изучение роли инфекционных (вирусно-бактериальные ассоциации) и наследственных факторов в развитии хронических воспалительных заболеваний суставов у детей сохраняют свою актуальность. Ювенильный артрит (ЮА) остается одной из наиболее обсуждаемых проблем современной детской ревматологии и педиатрии в целом, поскольку является распространенной патологией среди воспалительных ревматических заболеваний детского возраста [33–35].

Согласно современным представлениям, ЮА рассматривается как обобщающее понятие, объединяющее гетерогенную группу хронических заболеваний суставов, имеющих различный этиопатогенез и иммуногенетическое происхождение, различную нозологическую принадлежность и неоднозначный прогноз. В группу ЮА можно отнести ЮИА, ювенильный ревматический артрит (ЮРА) и ювенильный спондилоартрит (ЮСА). Среди ЮА наиболее значимым является ЮИА, приводящий к инвалидизации в детском возрасте [33, 35–37]. ЮИА, как и ЮА в целом, представляет гетерогенную группу, в которой выделяют разные формы и варианты течения. Традиционно принято выделение системных (суставно-висцеральных) и суставных форм [36].

По результатам исследований [34–35, 36–40], распространенность ЮА в разных странах колеблется от 0,05 до 0,6%, а заболеваемость – от 2 до 19 случаев на 100 тыс. детского населения в возрасте до 16 лет. Распространенность ЮА среди детей до 18 лет на территории Российской Федерации достигает 62,3 на 100 тыс., первичная заболеваемость – 16,2 на 100 тыс., в том числе среди подростков – соответственно 116,4 и 28,3, среди детей до 14 лет – 45,8 и 12,6 [35].

ЮА относятся к мультифакториальным заболеваниям, в развитии которых играют роль не только экзогенные (инфекционные и средовые), но и наследственные факторы, в том числе иммуногенетические [25, 34, 36, 41–43].

Отсутствие окончательного представления об этиологии и патогенезе, а также полиморфизм клинической картины ЮА создают ряд проблем в вопросах их диагностики и лечения.

Развитие и прогрессирование ЮИА определяется сочетанием генетически детерминированных и вторичных дефектов иммунорегуляторных механизмов, приводящих к быстрой трансформации физиологической острой воспалительной реакции в хроническое прогрессирующее воспаление. Однако механизмы становления аутоиммунного патогенеза ЮРА довольно сложны и, несмотря на многочисленные исследования, до конца не раскрыты [44, 45].

Таким образом, с одной стороны, большинство авторов признают ведущую роль в патогенезе ЮРА генетически детерминированного дисбаланса клеточного звена иммунной системы, в частности, CD4+- и Th1-лимфоцитов, моноцитов (макрофагов), секретируемых ими про- и противовоспалительных цитокинов. Развитие заболевания связывают с аутоантителами к IgG и возможностью его опосредования иммунными комплексами с привлечением полиморфноядерных лейкоцитов [46]. Но вопрос о соотношении и роли разных звеньев иммунокомплексного воспаления в патогенезе ЮРА остается дискуссионным. Спектр исследований, направленный на формирование научно обоснованной концепции патогенеза ЮИА за последние годы начинает смещаться в область молекулярно-биологических разработок иммуногенетического статуса заболевания: детализируются отклонения в биохимических профилях иммунной и генетической системы, определяются алгоритмы их взаимоотношений. В аспекте генетических исследований всё больше внимания уделяется повреждениям генетического аппарата отдельных клеток и механизмов, а также феномену нестабильности генома у больных ЮРА [47].

С другой стороны, ЮИА нередко сопровождается активацией коморбидной инфекции, и вирусно-бактериальное инфицирование у детей с ЮРА является прогностически неблагоприятным признаком, указывающим на бóльшую тяжесть болезни с возможностью возникновения необратимых процессов с нарушением функции суставов, развитием висцеритов и васкулитов [36, 48].

У детей с ЮИА выявляется 2 варианта инфицирования вирусами и бактериями: в начале заболевания и спустя несколько месяцев и лет от его дебюта. Во всех случаях как носительства, так и острой инфекции ЮРА протекает в виде более тяжелых клинических форм [49].

Нерешенным остается вопрос об уровне взаимосвязи инфекционных и генетических факторов в развитии и течении ЮА. По мнению ряда авторов [26, 31, 50], не исключается возможность инициации инфекционным агентом артрита, особенно у генетически предрасположенного больного. В отечественной и зарубежной литературе имеются данные о том, что ГВИ у детей с ЮИА не только утяжеляют его течение, но и могут участвовать в реализации патогенетических иммунокомплексных процессов [14, 49–51].

Имеются публикации о том, что, по меньшей мере, часть случаев РА, ювенального хронического артрита и так называемых серонегативных спондилоартропатий могут иметь вирусную этиологию [52]. Так, у некоторых больных прослеживается непосредственная связь развития хронического артрита с предшествовавшей вирусной инфекцией. Хронический синовит может быть обусловлен продолжительной местной антигенной стимуляцией вследствие персистирования вирусных агентов непосредственно в клетках синовиальной оболочки либо в результате систематического реинфицирования суставных тканей при наличии в организме устойчивого экстраартикулярного депо вирусной инфекции [53].

Фармакотерапия ЮА, в частности, ЮИА, остается одной из наиболее сложных проблем современной клинической медицины. К основным направлениям лечения ЮРА относятся стабилизация патологического процесса, предотвращение его обострения, а также реабилитация функциональных нарушений суставов, возникающих у ребенка в результате болезни. Лекарственная терапия больных ЮРА основана на применении трех групп медикаментов – НПВП, глюкортикоидов и базисных препаратов. При этом установлено, что результаты лечения зависят от формы болезни и сроков назначения терапии. Определена целесообразность сочетания симптом-модифицирующих средств (НПВП и внутрисуставные глюкокортикоиды) с метотрексатом, а при наличии инфекции – с внутривенными иммуноглобулином.

Согласно рекомендациям EULAR, иммуносупрессивную терапию следует начинать как можно раньше после установления диагноза, что позволяет не только снизить иммунное воспаление, но и затормозить деструкцию в суставах, а следовательно, сохранить трудоспособность и качество жизни пациентов. Наряду с «золотым стандартом» базисной противовоспалительной терапии метотрексатом в последние десятилетия используется биологическая терапия (антицитокиновые моноклональные антитела, антитела к рецепторам иммунокомпетентных клеток и др. Нельзя не учитывать тот факт, что использование генно-инженерных биологических препаратов, мишенью которых являются узловые патогенетические звенья воспалительного процесса (ФНО-α, ИЛ-1, ИЛ-6, В-клетки и т. д.) способствуют не только подавлению аутоиммунных реакций, но и создают условия для реактивации латентных вирусных инфекций [48, 54–57]. Это часто не только затрудняет проведение терапии базисными препаратами, лимитируя их использование, но и может определять неблагоприятные исходы основного заболевания за счет поддержания аутоиммунного процесса и формирования порочного патологического круга [58].

В то же время в современной литературе встречаются лишь единичные работы, посвященные изучению эффективности пpотивовирусных препаратов в педиатричекой ревматологии [58, 59]. Дискуссионными остаются вопросы о возможности и длительности применения этих препаратов у детей, целесообразности их использования при разных стадиях и клинических вариантах ЮА.

Поэтому вопрос о роли ГВИ как причинного агента, усугубляющего дефект иммунорегуляторных систем и обусловливающего развитие иммунных нарушений, лежащих в основе ЮИА, является актуальным. Его решение позволит не только определять факторы, способствующие развитию заболевания, но в ряде случаев обозначит перспективы прогнозирования его клинического течения.


Literature


1. Isakov V.A., Arhipova V.I., Isakov D.V. [Human herpesvirus infections]. Saint Petersburg: Special’naja literatura, 2013; 51–198. (In Russ.)

2. Bardley H., Markowitz L.E., Gibson T., McQuilan G.M. Seroprevalence of herpes simplex virus types 1 and 2 United States, 1999–2000. J. Infect Dis. 2014; 209(3): 325–33.

3. Kawai K., Gebremeskel B.G., Acosta C.J. Systematic review of incidence and complications of herpes zoster: towards a global perspective. BMJ Open. 2014; (4): е004833.

4. Bokovoj A.G. [Herpes virus infection in children: diagnosis, clinic and treatment. Role in the formation of the contingent of frequently ill children. Textbook]. Moscow: MAKS Press, 2008. 144 p. (In Russ.)

5. Mangusheva Ja.R., Haertynova I.M., Mal’ceva L.I. [Cytomegalovirus infection in children]. Prakticheskaja medicina 2014; (7): 11–6. (In Russ.)

6. Baranaeva E.A., Merkulova E.P. [Acute herpetic stomatitis in children]. Mezhdunarodnye obzory: klinicheskaja praktika i zdorov’e 2013; (1): 35–6. (In Russ.)

7. Ushakova G.M., Vasil’ev V.V., Osipova Z.A. Ptichnikova N. N., Vlasjuk V. V. [Comparative characteristics of clinical and laboratory signs of congenital herpes virus infection in children with the peculiarities of the pregnant mother]. Pediatr 2010; (1): 84–5. (In Russ.)

8. Yang X., Nishida N., Zhao X., Kanegane H. Advances in Understanding the Pathogenesis of Epstein-Barr Virus-Associated Lymphoproliferative Disorders. Iran J. Allergy Asthma Immunol. 2015; 14(5): 462–71.

9. Arnold M., Itzikowitz R., Young B., Machoki S.M., Hsiao N.Y., Pillay K., Alexander A. Surgical manifestations of gastrointestinal cytomegalovirus infection in children: Clinical audit and literature review. J. Pediatr. Surg. 2015; 50(11): 1874–9. DOI: 10.1016/j.jpedsurg. 2015.06.018. Epub 2015 Jun 30.

10. James S.H., Kimberlin D.W. Neonatal Herpes Simplex Virus Infection. Infect. Dis. Clin. North Am. 2015; 29(3): 391–400. DOI: 10.1016/j.idc.2015.05.001. Epub 2015 Jul 4.

11. Drebber U., Hardt A., Dienes H.P., Odenthal M. Cytomegalovirus. Pathological-anatomical manifestations and detection methods. Pathologe 2011; 32(5): 418–27. DOI: 10.1007/s00292-011-1449-8.

12. Krasnov V.V., Obrjadina A.P. [Clinical and laboratory characteristic of cytomegalovirus infection in children]. Prakticheskaja medicina 2012; (7): 137–9. (In Russ.)

13. Kravchenko P.N., Olejnik E.K. [The mechanisms responsible for immunological toleran]. Trudy Karel’skogo nauchnogo centra Rossijskoj akademii nauk 2015; (12): 3–22. DOI: 10.17076/eb230. (In Russ.)

14. Bochancev S.V., Potrohova E.A., Sobotjuk N.V., Ustjan L.A., Pertel’s T.G. [Diagnosis of viral infections of Epstein–Barr in systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis.]. Rossijskij pediatricheskij zhurnal 2014; 17(5): 42–8. (In Russ.)

15. Listopadova A.P., Anichkov N.M., Petrovskij A.N., Novikova V.P., Mel’nikova Ju.I., Slizovskij N.V. [Morphological features of the gastric mucosa in children with juvenile arthritis]. Ехperimental’naja i klinicheskaja gastrojenterologija 2014, (6): 8–12. (In Russ.)

16. Рopova T.E., Shnajder N.A., Petrova M.M., Nikolaeva T.Ja., Kantimirova E.A., Isaeva N.V., Shnajder V.A., Panina Ju.S., Djuzhakova A.V., Djuzhakov S.K. [Herpesvirus-associated central and peripheral nervous system involvement: two clinical cases]. Nevrologija, psihiatrija, psihosomatika 2015; 7(2): 28–34. (In Russ.)

17. Totoljan G.G., Il’chenko L.Ju., Fjodorov I.G., Kozhanova T.V., Morozov V.A., Kjuregjan K.K. [The influence of herpes viruses on the course of chronic liver diseases]. Arhiv vnutrennej mediciny 2013; (6): 18–24. (In Russ.)

18. Melehina E.V., Chugunova O.L., Filippov A.V. [To the question about the role of viruses in formation of chronic infections of the genitourinary system]. Rossijskij medicinskij zhurnal 2013; (2): 27–30. (In Russ.)

19. Spivak E.M., Levit R.M., Kormshhikov I.S. [Features of inflammatory process in the mucosa of the stomach when it is combined bacterial and viral infection in childhood and adolescence]. Vestnik Kostromskogo gosudarstvennogo universiteta imеni N.A. Nekrasova 2014; 20(7): 56–8. (In Russ.)

20. Kofteridis D.P., Koulentaki M., Vafachis A. Christofaki M., Mazokopakis E., Papazoglou G., Samonis G. Ebstein-Barr virus hepatitis. Eur. J. Inter. Med. 2011; 22: 73–6. DOI: 10.1016/j.ejim.2010.07.016. Epub 2010 Aug 19.

21. Imbalzano E., Casciaro M., Quartuccio S., Minciullo P.L., Cascio A., Calapai G., Gangemi S. Association between urticaria and virus infections: A systematic review. Allergy Asthma Proc. 2016; 37(1): 18–22. DOi: 10.2500/aap.2016.37.3915. Epub 2015 Dec 3.

22. Ong P.Y., Leung D.Y. Bacterial and Viral Infections in Atopic Dermatitis: a Comprehensive Review. Clin. Rev. Allergy Immunol. 2016; 51(3): 329-37.

23. Kim J.R., Chae J.N., Kim S.H., Ha J.S. Subpopulations of regulatory T cells in rheumatoid arthritis, systemic lupus erythematosus, and Behcet’s disease. J. Korean. Med. Sci. 2012;27(9): 1009–13. DOI: 10.3346/jkms.2012.27.9.1009.

24. Dovnar-Zapol’skaja O.N. [Characteristic clinical and laboratory parameters in children with systemic connective tissue diseases (juvenile rheumatoid arthritis, juvenile scleroderma, systemic lupus erythematosus]. Cand. Med. Diss. Minsk, 2012. (In Russ.)

25. Lossius A., Johansen J.N., Torkildsen O., Vartdal F., Holmoy T. Ebstein-Barr virus in systemic lupus erythematosus, rheumatoid arthritis and multiple sclerosis – association and causation. Review article. Viruses 2012; (12): 3701–30.

26. Halenius A., Hengel H. Human cytomegalovirus and autoimmune disease. Biomed. Res. Int. 2014; 2014: 472978. DOI: 10.1155/2014/472978. Epub 2014 Apr 29.

27. Jansen M.A., van den Heuvel D., van der Zwet K.V., Jaddoe V.W., Hofman A., Escher J.C., Fraaij P.L., Hooijkaas H., van Zelm M.C., Moll H.A. Herpesvirus Infections and Transglutaminase Type 2 Antibody Positivity in Childhood: The Generation R Study. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2016; 63(4): 423–30. DOI: 10.1097/MPG.0000000000001163.

28. Gan L., O’Hanlon T.P., Lai Z., Fannin R., Weller M.L., Rider L.G., Chiorini J.A., Miller F.W. Gene Expression Profiles from Disease Discordant Twins Suggest Shared Antiviral Pathways and Viral Exposures among Multiple Systemic Autoimmune Diseases. PLoS One 2015; 10(11): e0142486. DOI: 10.1371/journal.pone.0142486. eCollection 2015.

29. Reynier F., Verjat T., Turrel F., Imbert P.E., Marotte H., Mougin B., Miossec P. Increase in human endogenous retrovirus HERV-K (HML-2) viral load in active rheumatoid arthritis. Scand. J. Immunol. 2009; 70(3): 295–9. DOI: 10.1111/j.1365-3083.2009.02271.

30. Mohammad A.A., Rahbar A., Lui W.O. Davoudi B., Catrina A., Stragliotto G., Mellbin L., Hamsten A., Ryden L., Yaiw K.C., Soderberg-Naucler C. Detection of circulating hcmvmiR-UL112–3p in patients with glioblastoma, rheumatoid arthritis, diabetes mellitus and healthy controls. PLoS One 2014; 9(12): e113740. DOI: 10.1371/journal. pone.0113740.

31. Draborg A.H., Duus K., Houen G. Epstein-Barr virus in systemic autoimmune diseases. Clin. Dev. Immunol. 2013; 2013: 535738. DOI: 10.1155/2013/535738. Epub 2013 Aug 24.

32. Pakpoor J., Disanto G., Gerber J. E., Dobson R., Meier U.C., Giovannoni G., Ramagopalan S.V. The risk of developing multiple sclerosis in individuals se-ronegative for Epstein-Barr virus: a meta-analysis. Mult. Scler. 2013; 19(2): 162–6. DOI: 10.1177/1352458512449682.

33. Baranov A.A., Alekseeva E.I., Bzarova T.M. [Protocol for management of patients with juvenile arthritis]. Voprosy sovremennoj pediatrii 2013; 12(1): 37–56. (In Russ.)

34. Cassidy J.T., Petty R.E., Laxer R.M., Lindsley C.B. Textbook of pediatric rheumatology. 6th ed. Philadelphia: Saunders Elsevier, 2010. 794 р.

35. Cellucci T., Guzman J., Petty R.E., Batthish M., Benseler S.M., Ellsworth J.E. Houghton K.M., LeBLANC C.M., Huber A.M., Luca N., Schmeling H., Shiff N.J., Soon G.S., Tse S.M. Management of Juvenile Idiopathic Arthritis 2015: A Position Statement from the Pediatric Committee of the Canadian Rheumatology Association. J. Rheumatol. 2016; 43(10): 1773–6.

36. Zholobova E.S., Shahbazjan I.E., Ulybina O.V. Afonina E.Ju. [Juvenile rheumatoid (idiopathic) arthritis]. In: Geppe N.A., Podchernjaeva N.S., Lyskina G.A. (eds.). [Juvenile rheumatoid arthritis. Guide to pediatric rheumatology]. Moscow: GJeOTAR-Media, 2011; 162–245. (In Russ.)

37. Ravelli A. Handbook of Juvenile Idiopathic Arthritis. Switzerland, Adis (Springer International Publishing). 2016; 115–24.

38. Al-Hemairi M.H., Albokhari S.M., Muzaffer M.A. The Pattern of Juvenile Idiopathic Arthritis in a Single Tertiary Center in Saudi Arabia. Int. J. Inflam. 2016; (2016): 7802957. DOI: 10.1155/2016/7802957. Epub 2016 Feb 7.

39. Rohekar S., Chan J., Tse S.M., Haroon N., Chandran V., Bessette L., Mosher D., Flanagan C., Keen K.J., Adams K., Mallinson M., Thorne C., Rahman P., Gladman D.D., Inman R.D. 2014 Update of the Canadian Rheumatology Association/spondyloarthritis research consortium of Canada treatment recommendations for the management of spondyloarthritis. Part 1: principles of the management of spondyloarthritis in Canada. J. Rheumatol. 2015; 42: 654–64.

40. Abdwani R., Abdalla E., Al Abrawi S., Al-Zakwani I. Epidemiology of juvenile idiopathic arthritis in Oman. Pediatr. Rheumatol. Online J. 2015; 13: 33. doi: 10.1186/s12969-015-0030-z.

41. Donn R., De Leonibus., Meyer S., Stevens A. Network analysis and juvenile idiopathic arthritis (JIA): a new horizon for understanding of disease pathogenesis and therapeutic target identification. Pediatr. Rheumatol. Online J. 2016; 14(1): 40. DOI: 10.1186/s12969-016-0078-4.

42. Chang H.H., Tai T.S., Lu B., Iannaccone C., Cernadas M., Weinblatt M., Shadick N., Miaw S.C., Ho I.C. PTPN 22.6, a dominant negative isoform of PTPN22 and potential biomarkers of rheumatoid arthritis. PLoS One 2012; 7(3): e33067. DOI: 10.1371/journal. pone.0033067.

43. Song G.G., Bae S.C., Kim J.H., Lee Y.H. The PTPN22 C1858T polymorphism and rheumatoid arthritis: a metaanalysis. Rheumatol. Int. 2013; 33(8): 1991–9. DOI: 10.1007/s00296-013-2679-2.

44. Niu Q., Cai B., Huang Z.C., Shi Y.Y., Wang L.L. Disturbed Th17/Treg balance in patients with rheumatoid arthritis. Rheumatol. Int. 2012; 32(9): 2731–36. DOI: 10.1007/s00296-011-1984-x.

45. Li N., Ma T., Han J., Zhou J., Wang J., Zhang J., Zheng S. Increased apoptosis_Kim J.R., Chae J.N., Kim S.H., Ha J.S. Subpopulations of regulatory T cells in rheumatoid arthritis, systemic lupus erythematosus, and Behcet’s disease. J. Korean. Med. Sci. 2012; 27(9): 1009–13. DOI: 10.3346/jkms.2012.27.9.1009.

24. Dovnar-Zapol’skaja O.N. [Characteristic clinical and laboratory parameters in children with systemic connective tissue diseases (juvenile rheumatoid arthritis, juvenile scleroderma, systemic lupus erythematosus]. Cand. Med. Diss. Minsk, 2012. (In Russ.)

25. Lossius A., Johansen J.N., Torkildsen O., Vartdal F., Holmoy T. Ebstein-Barr virus in systemic lupus erythematosus, rheumatoid arthritis and multiple sclerosis – association and causation. Review article. Viruses 2012; (12): 3701–30.

26. Halenius A., Hengel H. Human cytomegalovirus and autoimmune disease. Biomed. Res. Int. 2014; 2014: 472978. DOI: 10.1155/2014/472978. Epub 2014 Apr 29.

27. Jansen M.A., van den Heuvel D., van der Zwet K.V., Jaddoe V.W., Hofman A., Escher J.C., Fraaij P.L., Hooijkaas H., van Zelm M.C., Moll H.A. Herpesvirus Infections and Transglutaminase Type 2 Antibody Positivity in Childhood: The Generation R Study. J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 2016; 63(4): 423–30. DOI: 10.1097/MPG.0000000000001163.

28. Gan L., O’Hanlon T.P., Lai Z., Fannin R., Weller M.L., Rider L.G., Chiorini J.A., Miller F.W. Gene Expression Profiles from Disease Discordant Twins Suggest Shared Antiviral Pathways and Viral Exposures among Multiple Systemic Autoimmune Diseases. PLoS One 2015; 10(11): e0142486. DOI: 10.1371/journal.pone.0142486. eCollection 2015.

29. Reynier F., Verjat T., Turrel F., Imbert P.E., Marotte H., Mougin B., Miossec P. Increase in human endogenous retrovirus HERV-K (HML-2) viral load in active rheumatoid arthritis. Scand. J. Immunol. 2009; 70(3): 295–9. DOI: 10.1111/j.1365-3083.2009.02271.

30. Mohammad A.A., Rahbar A., Lui W.O. Davoudi B., Catrina A., Stragliotto G., Mellbin L., Hamsten A., Ryden L., Yaiw K.C., Soderberg-Naucler C. Detection of circulating hcmvmiR-UL112–3p in patients with glioblastoma, rheumatoid arthritis, diabetes mellitus and healthy controls. PLoS One 2014; 9(12): e113740. DOI: 10.1371/journal. pone.0113740.

31. Draborg A.H., Duus K., Houen G. Epstein-Barr virus in systemic autoimmune diseases. Clin. Dev. Immunol. 2013; 2013: 535738. DOI: 10.1155/2013/535738. Epub 2013 Aug 24.

32. Pakpoor J., Disanto G., Gerber J. E., Dobson R., Meier U.C., Giovannoni G., Ramagopalan S.V. The risk of developing multiple sclerosis in individuals se-ronegative for Epstein-Barr virus: a meta-analysis. Mult. Scler. 2013; 19(2): 162–6. DOI: 10.1177/1352458512449682.

33. Baranov A.A., Alekseeva E.I., Bzarova T.M. [Protocol for management of patients with juvenile arthritis]. Voprosy sovremennoj pediatrii 2013; 12(1): 37–56. (In Russ.)

34. Cassidy J.T., Petty R.E., Laxer R.M., Lindsley C.B. Textbook of pediatric rheumatology. 6th ed. Philadelphia: Saunders Elsevier, 2010. 794 р.

35. Cellucci T., Guzman J., Petty R.E., Batthish M., Benseler S.M., Ellsworth J.E. Houghton K.M., LeBLANC C.M., Huber A.M., Luca N., Schmeling H., Shiff N.J., Soon G.S., Tse S.M. Management of Juvenile Idiopathic Arthritis 2015: A Position Statement from the Pediatric Committee of the Canadian Rheumatology Association. J. Rheumatol. 2016; 43(10): 1773–6.

36. Zholobova E.S., Shahbazjan I.E., Ulybina O.V. Afonina E.Ju. [Juvenile rheumatoid (idiopathic) arthritis]. In: Geppe N.A., Podchernjaeva N.S., Lyskina G.A. (eds.). [Juvenile rheumatoid arthritis. Guide to pediatric rheumatology]. Moscow: GJeOTAR-Media, 2011; 162–245. (In Russ.)

37. Ravelli A. Handbook of Juvenile Idiopathic Arthritis. Switzerland, Adis (Springer International Publishing). 2016; 115–24.

38. Al-Hemairi M.H., Albokhari S.M., Muzaffer M.A. The Pattern of Juvenile Idiopathic Arthritis in a Single Tertiary Center in Saudi Arabia. Int. J. Inflam. 2016; (2016): 7802957. DOI: 10.1155/2016/7802957. Epub 2016 Feb 7.

39. Rohekar S., Chan J., Tse S.M., Haroon N., Chandran V., Bessette L., Mosher D., Flanagan C., Keen K.J., Adams K., Mallinson M., Thorne C., Rahman P., Gladman D.D., Inman R.D. 2014 Update of the Canadian Rheumatology Association/spondyloarthritis research consortium of Canada treatment recommendations for the management of spondyloarthritis. Part 1: principles of the management of spondyloarthritis in Canada. J. Rheumatol. 2015; 42: 654–64.

40. Abdwani R., Abdalla E., Al Abrawi S., Al-Zakwani I. Epidemiology of juvenile idiopathic arthritis in Oman. Pediatr. Rheumatol. Online J. 2015; 13: 33. DOI: 10.1186/s12969-015-0030-z.

41. Donn R., De Leonibus., Meyer S., Stevens A. Network analysis and juvenile idiopathic arthritis (JIA): a new horizon for understanding of disease pathogenesis and therapeutic target identification. Pediatr. Rheumatol. Online J. 2016; 14(1): 40. DOI: 10.1186/s12969-016-0078-4.

42. Chang H.H., Tai T.S., Lu B., Iannaccone C., Cernadas M., Weinblatt M., Shadick N., Miaw S.C., Ho I.C. PTPN 22.6, a dominant negative isoform of PTPN22 and potential biomarkers of rheumatoid arthritis. PLoS One 2012; 7(3): e33067. DOI: 10.1371/journal. pone.0033067.

43. Song G.G., Bae S.C., Kim J.H., Lee Y.H. The PTPN22 C1858T polymorphism and rheumatoid arthritis: a metaanalysis. Rheumatol. Int. 2013; 33(8): 1991–9. DOI: 10.1007/s00296-013-2679-2.

44. Niu Q., Cai B., Huang Z.C., Shi Y.Y., Wang L.L. Disturbed Th17/Treg balance in patients with rheumatoid arthritis. Rheumatol. Int. 2012; 32(9): 2731–36. DOI: 10.1007/s00296-011-1984-x.

45. Li N., Ma T., Han J., Zhou J., Wang J., Zhang J., Zheng S. Increased apoptosis induction in CD4+ CD25+ Foxp3+ T cells contributes to enhanced disease activity in patients with matoid arthritis through IL-10 regulation. Eur. Rev. Med. Pharmacol. Sci. 2014; 18(1): 78–85.

46. McInnes I.B., Schett G. The Pathogenesis of Rheumatoid Arthritis. N. Engl. J. Med. 2011; 365: 2205–19. DOI 10.1056/NEJMra1004965.

47. Makarova T.P., Il’ina M.S., Semenov V.V., Senek S.A. [Assessment of genomic instability in patients with juvenile rheumatoid arthritis]. Prakticheskaja medicina 2013; (1):132–5. (In Russ.)

48. Davies H.D., Byington C.L., Maldonado Y.A., Barnett E.D., Edwards K.M., Lynfield R., Munoz-Rivas F.M., Nolt D.L., Nyquist A.C., Rathore M.H., Sawyer M.H., Steinbach W.J., Tan T.Q., Zaoutis T.E. Infectious Complications With the Use of Biologic Response Modifiers in Infants and Children. Pediatrics 2016; 138(2): e20161209. DOI: 10.1542/peds.2016-1209. Epub 2016 Jul 18.

49. Soboleva N.G. [Juvenile rheumatoid arthritis in children of Krasnodar region (the features of etiopathogenesis, optimization of therapeutic tactics)]. Dr. Med. Diss. Krasnodar, 2009. (In Russ.)

50. Di Loreto S., Fabiano C., Nigro G. High prevalence of streptococcal or Epstein-Barr virus infections in children with acute non-septic monoarthritis. New Microbiol. 2014; 37(1):81–6. Epub 2014 Jan 15.

51. Aghighi Y., Gilani Sh.M., Razavi M., Zamani A., Daneshjoo K. Juvenile rheumatoid arthritis in children with Ebstein-Barr virus infection. Pak. J. Biol. Sci. 2007; 10(20): 3638–43.

52. Odumade O.A., Hogquist K.A., Balfour H.H.Jr. Progress and Problems in Understending and Managing Primary Epstein-Barr Virus Infections. Clin. Microbiol. Rev. 2011; 12(1): 193–209.

53. Toussirot E. Diagnosis and Management of Late-Onset Spondyloarthritis: Implications of Treat-to-Target Recommendations. Drugs Aging. 2015; 32(7): 515–24. DOI: 10.1007/s40266-015-0280-y.

54. Nicolai R., Cortis E., Rava L., Bracaglia C., Pardeo M., Insalaco A., Buonuomo P.S., Tozzi A.E., De Benedetti F. Herpes Virus Infections During Treatment With Etanercept in Juvenile Idiopathic Arthritis. J. Pediatric. Infect. Dis. Soc. 2016; 5(1): 76–9. DOI: 10.1093/jpids/piu078. Epub 2014 Jul 31.

55. Comar M., Delbue S., Lepore L., Martelossi S., Radillo O., Ronfani L., D’Agaro P., Ferrante P. Latent viral infections in young patients with inflammatory diseases treated with biological agents: prevalence of JC virus genotype 2. J. Med.Virol. 2013; 85(4): 716–22. DOI: 10.1002/jmv.23525. Epub 2013 Jan 30.

56. Kawada J., Iwata N., Kitagawa Y., Kimura H., Ito Y. Prospective monitoring of Epstein-Barr virus and other herpesviruses in patients with juvenile idiopathic arthritis treated with methotrexate and tocilizumab. Mod. Rheumatol. 2012; 22(4): 565–70. DOI: 10.1007/s10165-011-0552-2. Epub 2011 Nov 5.

57. Zhang N., Wilkinson S., Riaz M., Ostor A.J., Nisar M.K. Does methotrexate increase the risk of varicella or herpes zoster infection in patients patients with juvenile rheumatoid arthritis? A systematic literature review. Clin. Exp. Rheumatol. 2012; 30(6): 962–71. Epub 2012 Dec 17.

58. Che H., Lukas C., Combe B. Risk of herpes/herpes zoster during antitumor necrosis factor therapy in patients with rheumatoid arthritis. Systematic rewiew and meta-analysis. Joint Bone Spine 2014; 81(3): 215–21. DOI: 10.1016/j. jbspin.2013.07.009. Epub 2013 Aug 7.

59. Leuvenink R., Aeschlimann F., Baer W., Berthet G., Cannizzaro E., Hofer M., Kaiser D., Schroeder S., Heininger U., Woerner A. Clinical course and therapeutic approach to varicella zoster virus infection in children with rheumatic autoimmune diseases under immunosuppression. Pediatr. Rheumatol. Online J. 2016; 14(1): 34. DOI: 10.1186/s12969-016-0095-3.


About the Autors


For correspondence: Evgeniya Yu. Soldatova, soldatova-e@bk.ru


Similar Articles


Бионика Медиа