COVID-19 и риск реактивации герпесвирусной инфекции


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2021.11.2.55-62

Соломай Т.В., Семененко Т.А., Исаева Е.И., Ветрова Е.Н., Чернышова А.И., Роменская Э.В., Каражас Н.В.

1) Межрегиональное управление № 1 ФМБА России, Москва, Россия; 2) НИИ вакцин и сывороток им. И.И Мечникова Минобрнауки России, Москва, Россия; 3) Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, Москва, Россия; 4) Первый Московский государственный медицинский университет им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский Университет), Москва, Россия; 5) Главный военный клинический госпиталь им. Н.Н. Бурденко Минобороны России, Московская область, Химки, Россия
Цель исследования. Изучение особенностей эпидемического процесса инфекций, вызванных вирусами простого герпеса 1-го и 2-го типов (ВПГ- 1, ВПГ-2), Эпштейна-Барр (ВЭБ), цитомегаловирусом (ЦМВ), вирусом герпеса человека 6-го типа (ВГЧ6) на фоне развития пандемии COVID-19.
Материалы и методы. Проведен ретроспективный анализ заболеваемости COVID-19 и регистрируемыми герпесвирусными инфекциями. На наличие маркеров инфицирования вирусами герпеса обследовано 92 донора крови и 95 пациентов с COVID-19 без дыхательной недостаточности.
Результаты. Выявлен более ранний и продолжительный подъем заболеваемости инфекционным мононуклеозом в 2020 г. по сравнению с 2019 г.; отсутствие достоверных различий между группами пациентов и доноров по частоте выявления IgG к ВПГ -1 (88–91,6%), ВПГ-2 (20–20,7%), ВЭБ (98,9–100%), ЦМВ (82,1–83,7%), ВГЧ-6 (48,4–51,1%); низкоавидных IgG к ВПГ (6,5–8,4%); ВЭБ (2,2–6,3%) и ЦМВ (0–1,1%); IgM к ВПГ-1 (0%), ВПГ-2 (0–1,1%,), ЦМВ (0–2,2%) и ВГЧ-6 (5,4–8,4%). Маркеры реактивации ВЭБ-инфекции (IgM VCA и IgG EA при наличии IgG VCA и IgG EBNA) достоверно чаще выявляли в группе пациентов – 70,5% и 56,8% (против 0 и 2,2% у доноров) (p < 0,05).
Заключение. SARS-CoV-2 является триггерным фактором, запускающим в организме человека механизм перехода ВЭБ от фазы латенции к литической репродукции, а пациенты COVID-19 представляют группу риска по реактивации хронической ВЭБ-инфекции.

Литература


1. Johnson R.W., Bouhassira D., Kassianos G., Leplège A., Schmader K.E., Weinke T. The impact of herpes zoster and post-herpetic neuralgia on quality-of-life. BMC Med. 2010; (8): 37. doi: 10.1186/1741-7015-8-37


2. Damm O., Witte J., Wetzka S., Prosser C., Braun S., Welte R., Greiner W. Epidemiology and economic burden of measles, mumps, pertussis, and varicella in Germany: a systematic review. Int. J. Public. Health 2016; 61(7): 847–60. doi: 10.1007/s00038-016-0842-8


3. Ablashi D., Agut H., Alvarez-Lafuente R., Clark D.A., Dewhurst S., DiLuca D. et al. Classification of HHV-6A and HHV-6B as distinct viruses. Arch. Virol. 2014; 159(5): 863–70. doi: 10.1007/s00705-013-1902-5


4. Мелехина Е.В., Лысенкова М.Ю., Свитич О.А., Музыка А.Д., Каражас Н.В., Рыбалкина Т.Н. и др. Особенности течения инфекции ВГЧ-6А и ВГЧ-6В у детей, проживающих в Московском регионе. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2018; (2): 42–9. doi: 10.18565/epidem.2018.2.42-9

Melehina E.V., Lysenkova M.Yu., Svitich O.A., Muzyka A.D., Karazhas N.V., Rybalkina T.N. et al.


5. Соломай Т.В., Семененко Т.А., Каражас Н.В., Рыбал­кина Т.Н., Корниенко М.Н., Бошьян Р.Е. и др. Оценка риска инфицирования герпесвирусами при переливании донорской крови и ее компонентов. Анализ риска здоровью 2020; (2): 135–42 doi: 10.21668/health.risk/2020.2.15.eng

Solomay T.V., Semenenko T.A., Karazhas N.V., Rybalkina T.N., Kornienko M.N., Bosh’yan R.E. et al.


6. Соломай Т.В., Семененко Т.А. Вирусные гепатиты В, С и инфекционный мононуклеоз: эпидемиологическое сходство и различия. Вопросы вирусологии 2020; 65(1): 27–34 doi: https://doi.org/10.36233/0507-4088-2020-65-1-27-34

Solomay T.V., Semenenko T.A.


7. Sharifipour S., Davoodi Rad K. Seroprevalence of Epstein–Barr virus among children and adults in Tehran, Iran. New Microbes New Infect. 2020; 34: 100641. doi: 10.1016/j.nmni.2019.100641


8. Cui J., Yan W., Xu S., Wang Q., Zhang W., Liu W., Ni A. Anti-Epstein–Barr virus antibodies in Beijing during 2013<2017: What we have found in the different patients. PLoS One 2018; 13(3): e0193171. doi: 10.1371/journal.pone.0193171


9. Beader N., Kolarić B., Slačanac D., Tabain I., Vilibić-Čavlek T. Seroepidemiological Study of Epstein–Barr Virus in Different Population Groups in Croatia. Isr. Med. Assoc. J. 2018; 20(2): 86–90.


10. Smatti M.K., Yassine H.M., Abu Odeh R., Al Marawani A., Taleb S.A., Althani A.A., Nasrallah G.K. Prevalence and molecular profiling of Epstein–Barr virus (EBV) among healthy blood donors from different nationalities in Qatar. PLoS One 2017; 12(12): e0189033. doi: 10.1371/journal.pone.0189033


11. Соломай Т.В., Семененко Т.А., Каражас Н.В., Рыбалкина Т.Н., Веселовский П.А., Пульнова Н.Л. и др. Особенности изменения показателей иммунного статуса лиц с активными и латентными формами герпесвирусных инфекций. Пермский медицинский журнал.2021; 38 (1): 46–63. doi: 10.17816/pmj38146%63

Solomay T.V., Semenenko T.A., Karazhas N.V., Rybalkina T.N., Veselovsky P.A., Pulnova N.L. et al.


12. Wang F., Nie J., Wang H., Zhao Q., Xiong Y., Deng L. et al. Characteristics of Peripheral Lymphocyte Subset Alterationin COVID-19 Pneumonia. J. Infect. Dis. 2020; 221(11): 1762–9. doi: 10.1093/infdis/jiaa150


13. Matsubara H., Konishi T., Saito K., Naito A., Sugisawa J., Nakayama S. et al.. Zoster duplex in a patient with influenza a and bacterial superinfection. J. Dermatol. 2020; 47(1): e32–e33. doi: 10.1111/1346-8138.15099


14. Pereiro T., Lourido T., Ricoy J., Valdés L. Influenza Virus, Herpes Simplex Virus and Methicillin-Resistant Staphylococcus aureus in an Immunocompetent Patient. Arch. Bronconeumol. 2018; 54(3): 159–60. doi: 10.1016/j.arbres.2017.07.005


15. Li C., Li Y., Yang Y., Wang J., Zhu C., Tang S. et al. The Detection and Characterization of Simplex Virus Type 1 in Confirmed Cases. Sci. Rep. 2019; 9(1): 12785. doi: 10.1038/s41598-019-48994-5


16. Rathore S.K., Dwibedi B., Pati S.S., Panda S., Panda M., Sabat J., Kar S.K. An Investigation on the Coinfection Measles and HSV-1 in Hospitalized Acute Encephalitis Syndrome Patients in Eastern India. Neurol. India 2019; 67(5): 1358–9. doi: 10.4103/0028-3886.271247


17. Anaedobe C.G., Ajani T.A. Co Simplex Virus Type 2 and HIV Infections among Pregnant Women in Ibadan, Nigeria. J. Glob. Infect. Dis. 2019; 11(1): 19–24. doi: 10.4103/jgid.jgid_56_18


18. Ferreira A.C., Romão T.T., Macedo Y.S., Pupe C., Nascimento O.J.M.; Fellow of the American Academy of Neurology (FAAN). COVID-19 and Herpes zoster co-infection presenting with trigeminalneuropathy.Eur J Neurol.2020;27(9):1748-1750. doi: 10.1111/ene.14361.


19. Tartari F., Spadotto A., Zengarini C., Zanoni R., Guglielmo A., Adorno A. et al. Herpes zoster in COVID-19-positive patients. In. J. Dermatol. 2020; 59(8): 1028–9. doi: 10.1111/ijd.15001


20. Elsaie M.L., Youssef E.A., Nada H.A.. Herpes zoster might be an indicator for latent COVID-19 infection. Dermatol. Ther. 2020; 33(4): e13666. doi: 10.1111/dth.13666


21. Le Balc’h P., Pinceaux K., Pronier C., Seguin P., Tadié J.M., Reizine F. Herpes simplex virus and cytomegalovirus reactivations among severe COVID-19 patients. Crit. Care 2020; 24(1): 530. doi: 10.1186/s13054-020-03252-3


22. Sinadinos A., Shelswell J. Oral ulceration and blistering in patients with COVID-19. Evid. Based. Dent. 2020; 21(2): 49. doi: 10.1038/s41432-020-0100-z


23. Bond P. Ethnicity and the relationship between covid-19 and the herpes simplex viruses. Med. Hypotheses 2021; 146: 110447. doi: 10.1016/j.mehy.2020.110447


24. Amorim Dos Santos J., Normando A.G.C., Carvalho da Silva R.L., De Paula R.M., Cembranel A.C. et al. Oral mucosal lesions in a COVID-19 patient: New signs or secondary manifestations? Int. J. Infect. Dis. 2020; 97: 326–8. doi: 10.1016/j.ijid.2020.06.012


25. Xu R., Zhou Y., Cai L., Wang L., Han J., Yang X. et al. Co-reactivation of the human herpesvirus alpha subfamily (herpes simplex virus-1 and varicella zoster virus) in a critically ill patient with COVID-19. Br. J. Dermatol. 2020; 183(6): 1145–7. doi: 10.1111/bjd.19484


26. Cao X., Zhang X., Meng W., Zheng H. Herpes Zoster and Postherpetic Neuralgia in an Elderly Patient with Critical COVID-19: A Case Report. J. Pain. Res. 2020; 13: 2361–5. doi: 10.2147/JPR.S274199


27. Dursun R., Temiz S.A. The clinics of HHV-6 infection in COVID-19 pandemic: Pityriasisrosea and Kawasaki disease. Dermatol. Ther. 2020; 33(4): e13730. doi: 10.1111/dth.13730


28. Brambilla L., Maronese C.A., Tourlaki A., Veraldi S. Herpes zoster following COVID-19: a report of three cases. Eur. J. Dermatol. 2020; 30(6): 754–6. doi: 10.1684/ejd.2020.3924


29. Kadambari S., Klenerman P., Pollard A.J. Why the elderly appear to be more severely affected by COVID-19: The potential role of immunosenescence and CMV. Rev. Med. Virol. 2020; 30(5): e2144. doi: 10.1002/rmv.2144


30. Amaral P.H., Ferreira B.M., Roll S., Neves P.D., Pivetta L,G,, Mohrbacher S. et al. COVID-19 and Cytomegalovirus Co-infection: A Challenging Case of a Critically Ill Patient with Gastrointestinal Symptoms. Eur. J. Case Rep. Intern. Med. 2020; 7(10): 001911. doi: 10.12890/2020_001911


31. García-Martínez F.J., Moreno-Artero E., Jahnke S. SARS-CoV-2 and EBV. Med. Clin. (Engl). 2020; 155(7): 319–20. doi: 10.1016/j.medcle.2020.06.010


32. Соломай Т.В., Филатов Н.Н. Сезонность инфекции, вызванной вирусом Эпштейна–Барр. Журнал инфектологии 2020; 12(4): 93–100. doi: 10.22625/2072-6732-2020-12-4-93-100

Solomay T.V., Filatov N.N.


33. Huang W., Berube J., McNamara M., Saksena S., Hartman M., Arshad T. et al. Lymphocyte subset counts in COVID-19 Patients: a meta-analysis. Cytometrya 2020; 97(8): 772–6. doi: 10.1002/cyto.a.24172


34. Mehta S.K., Bloom D.C., Plante I., Stowe R., Feiveson A.H., Renner A. et al. Reactivation of Latent Epstein-Barr Virus: A Comparison after Exposure to Gamma, Proton, Carbon, and Iron Radiation. Int. J. Mol. Sci. 2018;b19(10): pii: E2961. doi: 10.3390/ijms19102961


35. Баженова Л.Г., Ботвиньева И.А., Ренге Л.В., Полука­ров А.Н. Динамика распространенности TORCH-инфекций у беременных. Оценка риска первичного инфицирования плода. Мать и дитя в Кузбассе 2012; (1): 22–6.

Bazhenova L.G., Botvinyeva I.A., Renge L.V., Polukarov A.N.


36. Островская О.В., Власова М.А., Наговицына Е.Б., Морозова О.И., Ивахнишина Н.М. Распространенность TORCH-инфекций у женщин Приамурья. Бюллетень физиологии и патологии дыхания 2008; 30: 72–7.

Ostrovskaya O.V., Vlasova M.A., Nagovitsyna E.B., Morozova O.I., Ivakhnishina N.M.


37. Herrera-Ortiz A., Conde-Glez C.J., Vergara-Ortega D.N., García-Cisneros Olamendi-Portugal M.L., Sánchez-Alemán M.A. Avidity of antibodies against HSV-2 and risk to neonatal transmission among Mexican pregnant women. Infect. Dis. Obstet. Gynecol. 2013; 140–2. doi: 10.1155/2013/140142


38. Reward E.E., Muo S.O., Orabueze I.N.A., Ike A.C. Seroprevalence of herpes simplex virus types 1 and 2 in Nigeria: a systematic review and meta-analyses. Pathog. Glob. Health 2019; 113(5): 229–37. doi: 10.1080/20477724.2019.1678938


39. Dargham S.R., Nasrallah G.K., Al-Absi E.S., Mohammed L.I., Al-Disi R.S., Nofal M.Y., Abu-Raddad L.J. Herpes Simplex Virus Type 2 Seroprevalence Among Different National Populations of Middle East and North African Men. Sex. Transm. Dis. 2018; 45(7): 482–87. doi: 10.1097/OLQ.0000000000000791


40. Beader N., Kolarić B., Slačanac D., Tabain I., Vilibić-Čavlek T. Seroepidemiological Study of Epstein–Barr virus in Different Population Groups in Croatia. Isr. Med. Assoc. J. 2018; 20 (2): 86–90.


41. Fourcade G., Germi R., Guerber F., Lupo J., Baccard M., Seigneurin A. et al. Evolution of EBV seroprevalence and primary infection age in a French hospital and a city laboratory network, 2000–2016. PLoS One 2017; 12(4): e0175574. doi: 10.1371/journal.pone.0175574


42. Lachmann R., Loenenbach A., Waterboer T., Brenner N., Pawlita M., Michel A. et al. Cytomegalovirus (CMV) in the adult population of Germany. PLoS One 2018; 13(7): e0200267. doi: 10.1371/journal.pone.0200267


43. Cannon M.J., Schmid D.S., Hyde T.B.. Review of cytomegalovirus seroprevalence and demographic characteristics associated with infection. Rev. Med .Virol. 2010; 20(4): 202–13. doi: 10.1002/rmv.655


44. Aimola G., Beythien G., Aswad A., Kaufer B.B. Current understanding of herpesvirus 6 (HHV-6) chromosomal integration. Antiviral Res. 2020; 176: 104720. doi: 10.1016/j.antiviral.2020.104720


45. Drago F., Ciccarese G., Rebora A., Parodi A. Human herpesvirus-6, -7, and Epstein–Barr virus reactivation in pityriasisrosea during COVID-19. J. Med. Virol. 2021; 93(4): 1850–1. doi: 10.1002/jmv.26549


46. Paolucci S., Cassaniti I., Novazzi F., Fiorina L., Piralla A., Comolli G. et al. DNA increase in COVID-19 patients with impaired lymphocyte subpopulation count. Int. J. Infect. Dis. 2020; 104: 315–9. doi: 10.1016/j.ijid.2020.12.051


47. Ablashi D., Agut H., Alvarez-Lafuente R., Clark D.A., Dewhurst S., DiLuca D., Flamand L., Frenkel N., Gallo R., Gompels U.A. Classification of HHV-6A and HHV-6B as distinct viruses. Arch. Virol. 2014; 159(5): 863–70. DOI: 10.1007/s00705-013-1902-5


48. Мелехина Е.В., Лысенкова М.Ю., Свитич О.А., Музыка А.Д., Каражас Н.В., Рыбалкина Т.Н. и др. Особенности течения инфекции ВГЧ-6А и ВГЧ-6В у детей, проживающих в Московском регионе. Эпидемиол. инфекц. болезни. Актуал. вопр. 2018; (2): 42–9. DOI: 10.18565/epidem.2018.2.42-9

Melekhina E.V., Lysenkova M.Yu., Svitich O.A., Muzyka A.D., Karazhas N.V., Rybalkina T.N. et al.


Об авторах / Для корреспонденции


Соломай Татьяна Валерьевна – к.м.н., заместитель руководителя, Межрегиональное управление № 1 ФМБА России; старший научный сотрудник, лаборатория эпидемиологического анализа и мониторинга инфекционных заболеваний, НИИ вакцин и сывороток им. И.И Мечникова Минобрнауки России, Москва, Россия; solomay@rambler.ru; https://orcid.org/0000-0002-7040-7653
Семененко Татьяна Анатольевна – д.м.н., профессор, руководитель отдела эпидемиологии, Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России; профессор, кафедра инфектологии и вирусологии, Первый МГМУ им. И.М. Сеченова Минздрава России (Сеченовский университет), Москва, Россия; semenenko@gamaleya.org; https://orcid.org/0000-0002-6686-9011
Исаева Елена Ивановна – к.б.н., ведущий научный сотрудник, лаборатория иммунологии, НИИ вирусологии им. Д. И. Ивановского, Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, Москва, Россия; immunol.lab@mail.ru; https://orcid.org/0000-0002-2523-0692
Ветрова Елизавета Николаевна – научный сотрудник, лаборатория иммунологии, НИИ вирусологии им. Д. И. Ивановского, Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, Москва, Россия; immunol.lab@mail.ru; https://orcid.org/0000-0003-1902-5278
Чернышова Алена Игоревна – младший научный сотрудник, лаборатория иммунологии, НИИ вирусологии им. Д. И. Ивановского, Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, Москва, Россия; immunol.lab@mail.ru; https://orcid.org/0000-0003-1290-4042
Роменская Элина Владимировна – врач -эпидемиолог, филиал № 8, Главный военный клинический госпиталь им. Н.Н. Бурденко Минобороны России, Московская область, Химки, Россия; elinaromenskaya@yandex.ru; https://orcid.org/0000-0001-8097-9412 
Каражас Наталия Владимировна – д.б.н., профессор, заведующая лабораторией эпидемиологии оппортунистических инфекций, Национальный исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи Минздрава России, Москва, Россия; karazhas@inbox.ru; https://orcid.org/0000-0003-3840-963X


Похожие статьи


Бионика Медиа