Comparative analysis of specific and non-specific markers in patients with different stages of liver fibrosis in chronic hepatitis C


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2022.12.4.61-7

Nikolaeva L.I., Shevchenko N.G., Dedova A.V., Sapronov G.V., Samokhvalov E.I., Vakhromeev A.A.

1) Honorary Academician N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology, Ministry of Health of Russia, Moscow, Russia; 2) Russian Medical Academy of Continuing Professional Education, Ministry of Health, Moscow, Russia
Objective. To study a possible relationship between individual stages of liver fibrosis (LF) in patients with chronic hepatitis C (CHC) and their virological, serological, and immunogenetic parameters.
Subjects and methods. Five groups of 150 patients were formed by the stage of LF. The latter was determined employing transient fibroelastometry. Hepatitis C virus (HCV) RNA was detected and quantified by reverse transcription PCR using 2 versions of the RealBest HCV RNA kit. Antibodies to HCV were detected in the RecombiBest anti-HCV IgM and RecombiBest anti-HCV spectrum test systems. Polymorphic loci of the IFNL3 (rs8099917 T/G) and IFNL4 (rs1297960 C/T) genes were genotyped using the IL28B Immunogenetics kit.
Results. Comparison of the virological parameters did not reveal a significant relationship to a certain stage of LF. Among specific antibodies, only anti-HCV IgM showed an association with the fibrosis stages F2–F4 (p < 0.001). The detection rate for these antibodies significantly increased from F0 (46.7%) to F4 (93.3%). The ratio of genotype variants for polymorphic loci of the IFNL3 and IFNL4 genes changed with increasing LF stages. In the liver cirrhosis group, the CT–TG genotype was dominant, the differences in participants with F0 were significant (p = 0.0009).
Conclusion. The prognostic markers of impending liver cirrhosis include anti-HCV IgM in high titers and the CT-TG genotype in the polymorphic loci of the IFNL4 (rs1297960 C/T) and IFNL3 (rs8099917 T/G) genes.

Гепатит С (ГС) – инфекционное заболевание, вызываемое парентерально передающимся вирусом ГС (ВГС). Отличительная особенность данного вируса – его способность часто вызывать развитие хронической формы инфекции. В нашей стране доля лиц, имеющих антитела к ВГС, по оценкам зарубежных эпидемиологов, составляет 3,1–4,0% [1, 2]. Отечественные эксперты оценивают количество инфицированных лиц в 4,2 млн чел., что соответствует 2,9% [3]. С 2001 г. в нашей стране наблюдается стабильное снижение заболеваемости острым (ОГС), а с 2009 г. – хроническим ГС (ХГС) [4]. В 2020 г. среди впервые зарегистрированных случаев хронических вирусных гепатитов первое место занял ХГС – 24,5 тысячи случаев. В 2021 г. заболеваемость гепатитом С составила 27,8 случая на 100 тыс. населения, что в 1,47 раза меньше чем в 2009 г. [5].

В большинстве случаев ОГС протекает бессимптомно и с частотой около 70–85% завершается развитием ХГС, который также может иметь бессимптомное течение в начальном периоде болезни. Если у пациента не выявлен ГС и не проводилась специфическая терапия, поражение печени постепенно прогрессирует и может завершиться развитием цирроза печени (ЦП) у 30% пациентов и у 5% – первичной гепатоклеточной карциномы (ГКК).

С 2011 г. началась принципиально новая терапия ГС – препаратами прямого противовирусного действия (ПППД). Эффективность лечения различными комбинациями ПППД очень высока, более 95% [6, 7]. Успехи новых схем терапии позволили ВОЗ объявить возможность снижения к 2030 г. на 90% числа случаев инфицирования ВГС, на 65% снизить смертность и прогнозировать охват новой терапией 80% больных людей [8]. Однако у пациентов, достигших устойчивого вирусологического ответа (УВО) после лечения ПППД, сохраняется риск повторного заражения, развития скрытой (оккультной) формы инфекции и ГКК [9–11]. По данным ВОЗ, даже после внедрения новой терапии ежегодно в мире умирают около 300 000 больных ХГС, в основном из-за ЦП и ГКК [8]. Профилактическая вакцина от ГС пока не разработана.

Установлена зависимость эффективности противовирусной терапии от степени поражения печени [12]. Чем меньше стадия фиброза печени (ФП), тем с большей вероятностью достигается УВО. Оценку стадии ФП в настоящее время чаще всего выполняют неинвазивными методами: транзиентной или магнитно-резонансной фиброэластометрией и различными вариантами анализа сывороточных биомаркеров [13].

Известно, что вероятность самопроизвольной элиминации вируса в острой фазе болезни ассоциирована с генотипом СС в полиморфной области гена IFNL4 (rs12979860 C/T) [14]. Пациенты, имеющие этот генотип, часто успешно завершают лечение при некоторых вариантах ПВТ [15, 16]. Установлено, что эта полиморфная область гена влияет на продукцию относительно недавно открытого интерферона-λ3, который вовлечен в цепь событий, приводящих к элиминации ВГС, и, возможно, оказывает влияние на скорость поражения печени при ХГС [17]. Однонуклеотидные вариации генов IFNL3 и IFNL4 в полиморфных локусах rs8099917 T/G и rs12979860 C/T влияют на стабильность матричной РНК, с которой транслируется интерферон-λ3, и на его содержание в крови [18].

Цель исследования – изучение возможной связи между отдельными стадиями ФП у пациентов и их вирусологическими, иммунологическими и иммуногенетическими показателями.

Материалы и методы

В исследовании участвовали 150 пациентов с ХГС (до начала терапии) в возрасте 18–60 лет: 81 (54%) мужчина и 69 (46%) женщин. Все участники не имели ВИЧ-инфекции, онкологических и гематологических заболеваний и гепатита, вызванного другими этиологическими агентами. Проведение данного исследования было одобрено этическим комитетом Российской медицинской академии непрерывного профессионального образования (протокол №7 от 17.05.2016 г.), были получены информированные согласия пациентов на обработку их данных и проведение исследований крови. Для сравнительного анализа генетических данных была сформирована группа сравнения, которую составили 150 здоровых добровольцев. Время сбора образцов – с 2016 по 2021 г.

Транзиентную фиброэластометрию выполняли на приборе Fibroscan FS 502 (Echosens, Франция). Для оценки степени выраженности фиброза была использована шкала METAVIR. По результатам анализа участники были разделены на 5 групп по 30 чел.: 1-я – без фиброза (F0), 2-я – с фиброзом в стадии F1, 3-я – в стадии F2, 4-я – в стадии F3 и 5-я – в стадии F4.

Обнаружение РНК ВГС и ее количественную оценку проводили высокочувствительным методом полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР), используя набор реагентов «РеалБест РНК HCV», качественный и количественный вариант («Вектор-Бест», Россия).

Генотипирование ВГС выполняли методом ОТ-ПЦР с системой специфических праймеров или методом автоматического секвенирования зон генома 5’-NTR-core, NS5B, используя секвенатор 3130xl Genetic Analyzer (Applied Biosystems/Hitachi, Япония) [19, 20].

Антитела к антигенам ВГС выявляли иммуноферментным методом в сертифицированных тест-системах «РекомбиБест анти-ВГС IgM» и «РекомбиБест анти-ВГС-спектр» («Вектор-Бест», Россия), характеристика которых описана ранее [21].

Генотипы пациентов по полиморфным локусам генов IFNL3 (rs12979860 С/T) и IFNL4 (rs8099917 T/G) устанавливали методом ПЦР в режиме реального времени, используя набор реагентов «Иммуногенетика IL28B» и детектирующий амплификатор «ДТлайт» («ДНК-технология», Россия).

Статистическую обработку выполняли, используя пакет программ Statistica 10.0 (StatSoft Inc., Tulsa, США). Количественные показатели в группах пациентов представляли как среднее арифметическое или геометрическое ± двойная стандартная ошибка среднего. Тест на нормальность распределения выполняли, используя описательную статистику (normal probability plot). При наличии нормального распределения для оценки достоверности различий использовали t-критерий Стьюдента, в иных случаях применяли критерий χ2 (при необходимости с поправкой Йейтса) и точный метод Фишера. Корреляцию признаков оценивали методом Спирмена. Различия между сравниваемыми величинами (признаками) признавали статистически достоверными при p < 0,05.

Результаты и обсуждение

В анализируемых группах доля мужчин постепенно увеличивалась от 1-й к последней (46,7% против 60,3%; р > 0,05). Различия в длительности заболевания между группами колебались в пределах от 4,15 до 5,85 года. Активности АЛТ и АСТ постепенно нарастали от 1-й группы к последней (р > 0,05). Различия в доле пациентов с нормальными значениями печеночных ферментов между 1-й и последней группами достоверны (33,3% против 6,7%; р = 0,0211 и 36,7% против 6,7%; р = 0,0102 соответственно). Коэффициент корреляции Спирмена при сопоставлении стадий фиброза и доли участников с нормальными показателями АЛТ и АСТ по группам составил -0,9 (уровень значимости р < 0,05).

Данные по вирусной нагрузке (ВН) и частоте выявления отдельных субтипов ВГС в группах представлены в табл. 1. В группах со 2-й по 5-ю преобладали пациенты с ВН в диапазоне 105 МЕ/мл, только в группе без фиброза чаще выявляли пациентов с виремией в диапазоне 106 МЕ/мл. Наблюдается увеличение доли пациентов с виремией в диапазоне 105 МЕ/мл от 1-й группы к 5-й (р = 0,0201). Доля пациентов с виремией в диапазоне 104 МЕ/мл во всех группах была без существенных изменений, оценить колебание доли пациентов с виремией в диапазоне 107 МЕ/мл невозможно из-за наличия таких пациентов только в 3 последних группах.

63-1.jpg (75 KB)

Во всех группах доминировал ВГС субтипа 1b. В 1-й группе доля пациентов с ВГС субтипа 3а была близка к доле субтипа 1b (43,3 и 46,7%). Нарастание частоты обнаружения ВГС субтипа 3а от 1-й группы к последней было статистически недостоверно (р > 0,05). Надо отметить, что изменение структуры субтипов ВГС в группах отражает процесс распространения отдельных субтипов в Российской Федерации в течение последних 25 лет. Интенсивное проникновение и распространение ВГС субтипа 3а происходило в 1980–1990 гг. Постепенно этот субтип стал вытеснять лидирующий субтип 1b. В нашем исследовании в группе лиц, инфицированных около 25 лет назад (5-я группа), доминировал субтип 1b (66,7%). ВГС генотипа 1 часто обнаруживали у пациентов с ЦП, поэтому его считают ассоциированным с развитием цирроза [22, 23]. Однако и вирус генотипа 3 тоже рассматривают как неблагоприятный, так как с ним связано частое развитие стеатоза, что ускоряет фиброзирование печени [24, 25]. В нашем исследовании доля лиц, инфицированных ВГС субтипа 3а, была незначительна в группе участников с ЦП из-за невысокого содержания этого субтипа в популяции больных в 1990-е гг. [26]. В 2011–2014 гг. частота обнаружения субтипов 1b и 3а у инфицированных в Российской Федерации снижалась [27].

Результаты анализа специфических антител представлены в табл. 2. Выявлено нарастание титра анти-ВГС IgM от 1-й группы к последней, однако различия не имели статистической достоверности из-за значительных индивидуальных колебаний.

64-1.jpg (159 KB)

По мере увеличения стадии фиброза наблюдается нарастание моды (наиболее часто встречаемой величины) титра анти-ВГС IgM с 1:8 до 1:128. Только для анти-ВГС IgM обнаружено достоверное снижение (p < 0,001) количества пациентов, не имеющих этих антител, начиная с 3-й группы. Различия удельного веса пациентов без анти-ВГС IgM в 1-й и 5-й группах достоверны (р = 0,0001). Наличие анти-ВГС IgM и увеличение их титра ассоциировано с нарастанием стадии ФП (ρ = 0,9; р < 0,05). Поскольку анти-ВГС IgM образуются на новые антигенные детерминанты, очевидно, что мутации в вирусной РНК происходят чаще при высоких стадиях фиброза, которым соответствует большая длительность инфекции.

При сравнении среднегрупповых титров антител (IgG) к антигенам core, NS3, NS4ab, NS5a обнаружены легкие вариации и, в ряде случаев, их постепенное увеличение по мере нарастания стадии фиброза. Однако различия не достигли статистической достоверности, вероятно, из-за значительных индивидуальных колебаний в группах. Эти антитела не ассоциированы с увеличением стадий фиброза. Анти-core IgG и анти-NS3 IgG были обнаружены у всех участников, в отличие от антител к NS4ab и NS5a. Изменение доли участников, не имеющих анти-NS4ab IgG, от 1-й группы к 5-й статистически не достоверно (р < 0,05).

Известно, что однонуклеотидный полиморфизм генов IFNL3 (rs8099917 T/G) и IFNL4 (rs12979860 С/T) влияет на самопроизвольную элиминацию ВГС в случае острой инфекции и при некоторых видах ПВТ [14–16]. Можно предположить, что отдельные генотипы по полиморфным участкам этих генов будут чаще или реже встречаться у пациентов с различными стадиями фиброза. Генотипы пациентов по полиморфным локусам генов IFNL3 (rs8099917 T/G) и IFNL4 (rs12979860 С/T) в группах представлены в табл. 3.

65-1.jpg (171 KB)

От 1-й группы к 5-й постепенно снижается доля пациентов с генотипом СС/ТТ (rs12979860 и rs8099917). Вероятно, часть лиц с этим генотипом успешно завершили терапию (генотип благоприятствует достижению УВО), и поэтому их доля уменьшалась с увеличением стадии фиброза. Наряду с генотипом СС/ТТ постепенно снижалась доля генотипа СТ/ТТ, различия при сравнении 1-й и 5-й групп достоверны (p = 0,0211). Возможно, пациенты с этим генотипом тоже чаще достигают УВО. Но этот факт нуждается в изучении. От 1-й группы к 5-й увеличивалась доля лиц с генотипом CT/TG, различия при сравнении 1-й и 5-й групп достоверны (р = 0,0009). Этот генотип стал доминирующим в группе пациентов с ЦП. Очевидно, данный генотип можно рассматривать как прогностический маркер, свидетельствующий о повышенной вероятности развития ЦП у пациентов с ХГС.

Среди 150 больных ХГС лица с генотипом СС (rs12979860) составили 30%, что достоверно меньше, чем среди 150 здоровых участников (54%; р < 0,0001). Эта закономерность была обнаружена ранее [14]. По данным другого исследования1, среди 567 пациентов с ХГС (европеоиды), проживающих в Иркутской области, доля участников с генотипом СС составила 31,6%, что очень близко к значению, полученному в настоящем исследовании. Нами обнаружены различия по частоте встречаемости генотипа СТ/ТG у здоровых участников и пациентов с ХГС (p = 0,0026). Частота выявления генотипов СТ (rs12979860) и ТG (rs8099917) была достоверно выше у инфицированных (54 и 34% соответственно; р = 0,0001 и 0,0009). Близкие значения были получены при обследовании 567 пациентов с ХГС, проживающих в Иркутской области, – 54,5% (rs12979860 СТ) и 35,8% (rs8099917 ТG) [27]. В публикации К.В. Жданова и соавт. было проанализировано распределение аллельных пар тех же полиморфных зон генов IFNL3 и IFNL4 у пациентов с различными стадиями ФП [28]. Авторами показано доминирование генотипа ТG гена IFNL3 (rs8099917) у больных с ЦП. По другим генотипам данные не совпадали с результатами, полученными нами. Надо отметить, что у К.В. Жданова и соавт. [28] численность пациентов в группах имела сильные колебания (от 8 до 46 участников, n = 86). Вероятно, этим объясняется несовпадение с нашими данными. В другом исследовании [29], посвященном анализу генетических факторов, влияющих на скорость прогрессирования ФП у пациентов с ХГС в Японии (n = 176), было показано, что независимым предиктором быстропрогрессирующего ФП являются генотипы TG и GG гена IFNL3 (rs8099917), что совпадает с обнаруженной нами закономерностью – преобладанием варианта TG в группе пациентов с ЦП.

Заключение

В представленном исследовании изучена потенциально возможная взаимосвязь вирусологических, серологических и иммуногенетических факторов пациентов с отдельными стадиями ФП при ХГС. Сравнение вирусологических показателей не выявило достоверной связи с определенной стадией фиброза. Среди специфических антител только у анти-ВГС IgM обнаружена ассоциация с фиброзом F2–F4. Частота выявления этих антител достоверно увеличивалась от стадии F0 к F4. Соотношение вариантов генотипов по полиморфным локусам генов IFNL3 и IFNL4 менялось по мере возрастания ФП. Установлено, что прогностическими маркерами предстоящего ЦП являются высокие титры анти-ВГС IgM и генотип CT-TG в полиморфных локусах генов IFNL4 и IFNL3 (rs12979860 и rs8099917). Учитывая, что в мире отмечается рост численности больных ХГС в цирротической стадии, очевидна необходимость их раннего выявления и назначения терапии [30]. Научно-практическое значение данного исследования связано с развитием персонифицированной, прогностической и предиктивной медицины.


Literature


1. Daw M.A., El-Bouzedi A.A., Ahmed M.O., Dau A.A., Agnan M.M., Drah A.M. Geographic integration of hepatitis C virus: A global threat. World J. Virol. 2016; 5(4): 170–82. https://doi.org/ 10.5501/wjv.v5.i4.170


2. Petruzziello A., Marigliano S., Loquercio G., Cozzolono A., Cacciapuoti C. Global epidemiology of hepatitis C virus infection: An up-date of the distribution and circulation of hepatitis C virus genotypes. World J. Gastroenterol. 2016; 22(34): 7824–40. https://doi.org/10.3748/ wjg.v22.i34.7824


3. Чуланов В.П., Пименов Н.Н., Мамонов Н.А., Сагалова О.И., Шестакова И.В., Покровский В.И. Хронический гепатит С как проблема здравоохранения России сегодня и завтра. Терапевтический архив 2015; (11): 5–10.


Chulanov V.P., Pimenov N.N., Mamonov N.A., Sagalova O.I., Shestakova I.V., Pokrovsky V.I. [Chronic Hepatitis C in Russia: current challenges and prospects]. Terapevticheskii Arkhiv 2015; (11): 5–10. (In Russ.).


4. О состоянии санитарно-эпидемиологического благополучия населения в Российской Федерации в 2014 году: Государственный доклад. М., 2015. http://rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/22c/gd_2014_seb_dlya-sayta.pdf.


[On the state of sanitary and epidemiological well-being of the population in the Russian Federation in 2014: State report]. Moscow, 2015. (In Russ.). http://rospotrebnadzor.ru/upload/iblock/22c/ gd_2014_seb_dlya-sayta.pdf


5. Инфекционная заболеваемость в Российской Федерации за январь–декабрь 2021 г. http://www.rospotrebnadzor.ru


[Infectious incidence in the Russian Federation for January–December 2021]. (In Russ.). http://www.rospotrebnadzor.ru


6. Falada-Nwulia O., Suares-Cuervo C., Nelson D.R., Fried M.W., Segal J.B., Sulkowski M.S. Oral direct-acting agent therapy for hepatitis C virus infection: a systematic review. Ann Intern Med. 2017; 166: 637–48. https://doi.org/10.7326/M16-2575


7. Rosecrans A.M., Cheedalla A., Rives S.T., Scotti L.A., Harris R.E., Greenbaum A.H. et al. Public health clinic-based hepatitis C treatment. Am. J. Prev. Med. 2020; 59: 420–7. https://doi.org/10.1016/j.amepre. 2020.03.006


8. World Health Organization. Global hepatitis report. Geneva, Swizerland: WHO, 2017. https://www.who.int/hepatitis/publications/ global-hepatitis-report2017/en/


9. Bartenschlager R., Baumert T.F., Bukh J., Lemon M., Lindenbach S., Lohmann B. et al. Critical сhallenges and emerging opportunities in hepatitis C research in an era of potent antiviral therapy: considerations for scientists and funding agencies. Virus Res. 2018; 248: 53–62. https://doi.org/10.1016/j.virusres.2018.02.016


10. Roche B., Coilly A., Duclos-Vallec J.C., Sammuel D. The impact of treatment of hepatitis C with DAAs on occurrence of HCC. Liver Int. 2018; 38(Suppl.1): 139–45. https://doi.org/ 10.1111/liv.13659


11. Guarino M., Sessa A., Cossiga V., Special interest group on «Hepatocellular carcinoma and new anti-HCV therapies» of the Italian Association for the Study of the Liver. Direct-acting antivirals and hepatocellular carcinoma in chronic hepatitis C: a few lights and many shadows. World J. Gastroenterol. 2018; 24: 2582–95. https://doi.org/ 10.3748/wjg.v24.2582


12. Patel K., Friedrich-Rust M., Lurie Y., Grigorescu M., Stanclu C., Lee C.M. et al. FibroSURE and FibroScan in treatment response in chronic hepatitis C virus. World J. Gastroenterol. 2011; 17(41): 4581–9. https://doi.org/10.3748/wjg.v17.i41.4581


13. Bedossa P., Carrat F. Liver biopsy: the best, not the gold standard. J. Hepatol. 2009; 50(1): 1–3. https://doi.org/ 10.1016/jhep.2008.10.014


14. Thomas D.L., Thio C.L., Martin M.P., Qi Y., Ge D., O’Huigin C. et al. Genetic variation in IL28B and spontaneous clearance of hepatitis C virus. Nature 2009; 461(7265): 798–801. https://doi.org/10.1038/nature08463


15. Rauch A., Kutalik Z., Descombes P., Cai T., Di Iulio J., Mueller T. et al. Genetic variation in IL28B is associated with chronic hepatitis C and treatment failure: A Genome-Wide Association Study. Gastroenterology 2010; 38(4): 1338–45. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2009.12/056


16. Muir A.J. IL28B in the era of direct-acting antivirals for hepatitis C. J. Clin. Gastroenterol. 2013; 47(3): 222–7. https://doi.org/10.1097/ MCG.0b013e3182680221


17. Eslam M., Hashem A.M., Leung R., Romero-Gomez M., Berg T., Dore G.J. et al. Interferon-lambda rs12979860 genotype and liver fibrosis in viral and non-viral chronic liver disease. Nat. Commun. 2015; (6): 6422. DOI:10.1038/ncomms7422


18. Al-Qahtani A., Al-Anazi M., Abdo A.A., Sanai F.M., Al-Hamoudi W., Alswat K.A. et al. Correlation between genetic variations and serum level of interleukin 28B with genotypes and disease progression in chronic hepatitis C virus infection. J. Immunol. Res. 2015; (1): 768470. https://doi.org/10.1155/2015/768470


19. Ohno T., Mizokami M., Wu N., Saleh M.G., Ohba K.-I., Orito E. et al. New hepatitis C virus (HCV) genotyping system that allows for identification of HCV genotypes 1a, 1b, 2a, 3a, 3b,4, 5a, and 6a. J. Clin. Microbiol. 1997; 35(1): 201–7. https://doi.org/10.1128/jcm.35.1.201-207


20. Sanger F., Niclein S., Coulson A.R. DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1977; 74: 5463–7. https://doi.org/10.1073/pnas.74.12.5463


21. Nikolaeva L.I., Blokhina N.P., Tsurikova N.N., Voronkova N.V., Miminoshvili M.I., Braginsky D.M. et al. Virus-specific antibody titres in different phases of hepatitis C virus infection. J. Viral. Hepatol. 2002; (9): 429–37. https://doi.org/10.1046/j.1365-2893.2002.00369.x


22. Bortolotii F., Verucchi G., Camma C., Cabibbo G., Zancan L., Indolfi G. et al. Long-term course of chronic hepatitis C in children: from viral clearance to end-stage liver disease. Gastroenterology 2008; 134(7): 1900–7. https://doi.org/10.1053/j.gastro.2008.02.082


23. Roffi L., Redaelli A., Colloredo G., Minola E., Donada C., Picciotto A. Outcome of liver disease in a large cohort of histologically proven chronic hepatitis c: influence of HCV genotype. Eur. J. Gastroenterol. Hepatol. 2001; 13(5): 501–6.


24. Bochud P.-Y., Cat T., Overbeck K., Bochud M., Dufour J.F., Müllhaupt B. et al. Genotype 3 is associated with accelerated fibrosis progression in chronic hepatitis C. J. Hepatol. 2009; 51(4): 655–66. https://doi.org/10.1016/j.hep.2009.05.016


25. Wu N., Rao H.-Y., Yang W.-B., Gao Z.-L., Yang R.-F., Fei R. et al. Impact of hepatitis C virus genotype 3 on liver diease progression in a Chinese national cohort. Chin. Med. J. (Engl.). 2020; 133(3): 253–61. https://doi.org/10.1097/CM9. 0000000000000629


26. Самохвалов Е.И., Николаева Л.И., Альховский С.В., Хлопова И.Н., Макашова В.В., Петрова Е.В. и др. Частота встречаемости отдельных субтипов вируса гепатита С в Московском регионе. Вопр. вирусол. 2013; 58(1): 36–40.


Samokhvalov E.I., Nikolaeva L.I., Alkhovskiy S.V., Khlopova I.N., Makashova V.V., Petrova E.V. et al. [Frequency of detection of different hepatitis C virus subtypes in the Moscow Region]. Problems of Virology 2013; 58(1): 36–40. (In Russ.).


27. Mukomolov S., Trifonova G., Levakova I., Bolsun D., Krivanogova E. Hepatitis C in the Russian Federation: challenges and future directions. Hepat. Med. 2016; (8): 51–60. https://doi.org/10.2147/HMER.S50172


28. Жданов К.В., Гусев Д.А., Козлов К.В., Сукачев В.С., Шекуров А.В., Жабров С.С. и др. Взаимосвязь полиморфизмов гена ИЛ-28В, клинико-лабораторных и вирусологических показателей при хронической HCV-инфекции. Журн. инфектол. 2014; 6(4): 19–26.


Zhdanov K.V., Gusev D.A., Kozlov K.V., Sukachyov S.V., Shekurov A.V., Zhabrov S.S. et al. [Relationship between gene polymorphism of IL-28B and clinical laboratory and virologic parameters in patients with chronic HCV infection]. J. Infectologii. 2014; 6(4): 19–26. (In Russ.).


29. Tamaki N., Kurosaki M., Higuchi M., Takada H., Nakakuki N., Yasui Y. et al. Genetic polymorphisms of IL28B and PNPLA3 are predictive for HCV related rapid fibrosis progression and identify patients who require urgent antiviral treatment with new regimens. PLOS Оne 2015; 10(9): e0137351. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0137351


30. Zai M., Long J., Liu S., Liu C., Li L., Yang L., Li Y., Shu B. The burden of liver cirrhosis and underlying etiologies: results from the global burden of disease study 2017. Aging (Albany NY) 2021; 13(1): 279–300. https://doi.org/10.18632/aging.104127


About the Autors


Lyudmila I. Nikolaeva, BD, leading researcher of laboratory of gene engineering products of N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology; l.i.nikolaeva@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-1323-5568.
Nadezhda G. Shevchenko, junior researcher of laboratory of gene engineering products of N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology; graduate student of Russian Medical Academy of Continuing Professional Education, Ministry of Health, Moscow, Russian Federation; dr.nadya@inbox.ru; http://orcid.org/0000-0002-2486-4554;
Anna V. Dedova, research assistant of laboratory of gene engineering products of N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology; dedova.anna2010@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-2491-9324
Georgiy V. Sapronov, PhD in medicine, senior researcher of laboratory of gene engineering products of N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology; associate professor of department of infectious diseases of Russian Medical Academy of Continuing Professional Education; g_sapronov@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-2154-2904
Samokhvalov I. Evgeniy, PhD in biology, leading researcher of laboratory of viral ecology of N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology; e-samokh@hotmail.com; http://orcid.org/0000-0002-1941-0996
Artemiy A. Vakhrоmeev, junior researcher of laboratory of gene engineering products of N.F. Gamaleya National Research Center of Epidemiology and Microbiology; bioartemiyvakhrameev@gmail.com; https://orcid.org/0000-0002-8070-5208


Similar Articles


Бионика Медиа