Молекулярно-генетические механизмы лекарственной резистентности Plasmodium falciparum


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2020.10.4.80-7

Соловьев А.И., Усков А.Н., Коваленко А.Н., Капацына В.А., Ракин А.И.

1) ФГБВОУ «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Министерства обороны Российской Федерации, Санкт-Петербург, Россия; 2) ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней Федерального медико-биологического агентства», Санкт-Петербург, Россия; 3) ГБУЗ «Клиническая инфекционная больница им. С. П. Боткина», Санкт-Петербург, Россия
Цель исследования. Изучение особенностей метаболизма P. falciparum, фармакологического действия противомалярийных препаратов и молекулярно-генетических механизмов формирования лекарственной резистентности возбудителей малярии, вызванной P. falciparum.
Материалы и методы. Проведен анализ данных о современных противомалярийных лекарственных средствах, геноме малярийных плазмодиев и механизмах формирования лекарственной резистентности P. falciparum.
Результаты. Показано, что противомалярийные препараты могут блокировать или конкурентно замещать транспортные белки, а также ключевые паразитарные ферменты, катализирующие основные метаболические пути пластического и энергетического обмена. Мишенями могут служить метаболиты поглощаемого плазмодиями гемоглобина, ферменты электронно-транспортной цепи, а также такие паразитарные ферменты, как цитохром b, дигидроптероатсинтаза, дигидрофолатредуктаза, кальций-зависимая АТФ-синтаза, фосфатидилинозитол-3-киназа, дигидрооротатдегидрогеназа и другие. Основные механизмы лекарственной устойчивости связаны с генетической гетерогенностью возбудителей инфекции. В формировании устойчивости важное значение имеют SNP мутации по локусам генов PfCRT, PfMDR1, PfATP6, PfDHPS, PfDHFR, PfCYTB, а также рекомбинация генетического материала плазмодиев в ходе эритроцитарной шизогонии. Формированию резистентных штаммов и отбору мутаций лекарственной устойчивости способствует длительное персистирование паразитов в крови на фоне приема противомалярийных препаратов.
Заключение. Основными принципами этиотропного лечения малярии должны служить раннее начало лечения, а также комбинированная терапия с использованием наиболее эффективных противомалярийных препаратов разных фармакологических групп в дозировках, обеспечивающих быструю элиминацию возбудителей из организма больного.

Малярия – одна из наиболее широко распространенных и опасных инфекций [1, 2]. По данным ВОЗ, малярией ежегодно болеют около 660 000 человек, около 330 000 погибают [3, 4]. Более 99% случаев смерти от малярии приходится на долю тропической формы заболевания, вызываемой Plasmodium falciparum (P. falciparum). Эта инфекция представляет серьезную проблему для жителей развитых стран, по служебной или личной необходимости выезжающих в эндемичные регионы [5]. В РФ ежегодно регистрируются случаи гибели лиц, заразившихся малярией, вызванной P. falciparum, при посещении стран Африки, Юго-Восточной Азии, Южной Америки, островов Океании [3, 5]. Причинами этого служит высокая вирулентность P. falciparum, а также интенсивное формирование у паразитов устойчивости к действию противомалярийных препаратов [3, 6]. Если осложненное течение малярии, вызванной высоковирулентными возбудителями, может быть предупреждено своевременной диагностикой и ранним началом этиотропной терапии, то лекарственная резистентность плазмодиев до настоящего времени остается нерешенной проблемой для практической медицины [3, 5, 7]. Ситуация осложняется ограниченным перечнем противомалярийных препаратов, прошедших государственную регистрацию в РФ. Нередко больным малярией, вызванной P. falciparum, вынужденно назначают лишь 1 этиотропный препарат, недостаточно эффективный в отношении лекарственноустойчивых паразитов, в то время как отход от практики монотерапии низкоэффективными средствами стал общемировой нормой лечения малярии [6–9].

81-1.jpg (74 KB)

Цель работы – изучение и обобщение данных об особенностях метаболизма P. falciparum, фармакологическом действии противомалярийных препаратов и молекулярно-генетических механизмах формирования лекарственной резистентности возбудителей малярии, вызванной P. falciparum, и определение современных тенденций научных исследований в этой области.

Такое положение во многом объясняется недостатком у врачей и организаторов системы здравоохранения знаний в области фармакологии малярии и лекарственной резистентности возбудителей. В этой ситуации становится актуальным формирование у медицинских специалистов современных представлений о механизмах действия лекарственных препаратов, а также молекулярно-генетических механизмах, лежащих в основе формирования лекарственной резистентности малярийных плазмодиев.

Были использованы материалы базы данных PlasmoDB (Plasmodium Data Base), содержащей сведения о геноме малярийных плазмодиев.

Арсенал этиотропных средств для лечения малярийной инфекции насчитывает более 20 препаратов, которые относятся к разным фармакологическим группам, отличающимся избирательностью воздействия на основные метаболические пути паразитарной клетки (табл. 1).

В настоящее время перечень препаратов, рекомендованных ВОЗ, ограничен и включает высокоэффективные, а также хорошо переносимые лекарственные средства с различным механизмом лекарственного воздействия на возбудителей (табл. 2).

82-1.jpg (216 KB)

Противомалярийные препараты могут блокировать или конкурентно замещать транспортные белки, а также ключевые паразитарные ферменты, катализирующие основные метаболические пути пластического и энергетического обмена [2, 10] (табл. 3).

Действие противомалярийных препаратов в основном направлено на эритроцитарные стадии развития паразитов. Интенсивное циклическое размножение плазмодиев предполагает высокую активность метаболических процессов, разобщение которых приводит к гибели паразитов [2]. Интенсивные обменные процессы обеспечиваются за счет поглощения паразитом гемоглобина из цитоплазмы пораженного эритроцита [8]. В пищеваритальной вакуоли плазмодия кровяной пигмент подвергается деградации. Питательным субстратом служит его белковая фракция. Железосодержащие компоненты пигмента (гематин, порфирин) токсичны для паразитов и метаболизируются их ферментными системами в нетоксичный гемозин, который откладывается в виде зернистости Маурэра и Шюфнера [11]. Разобщение этого метаболического пути с помощью химиопрепаратов приводит к накоплению токсичных продуктов и гибели плазмодиев. Трофозоит развивается внутри эритроцита, защищенный от цитоплазмы клетки хозяина мембраной паразитофорной вакуоли. В ее формировании участвует апикопласт паразита (видоизмененный аналог пластид), в строме которого происходит метаболизм жирных кислот II типа, необходимых для формирования структур биологической мембраны [12, 13]. Препараты, проникающие в апикопласт, нарушают эти процессы, что приводит к повреждению мембраны паразитофорной вакуоли, вызывая замедленный лечебный эффект [14, 15]. В процессе развития паразитов интенсивно реплицируется их ДНК. При этом существенно активируется фолатный путь биосинтеза нуклеиновых кислот [16]. Конкурентное замещение ключевых ферментов этого метаболического пути нарушает синтез нуклеиновых кислот и приводит к гибели всей генерации паразитов [8]. Интенсивное развитие сопровождается высоким уровнем биосинтеза полипептидов и фолдингом белков в эндоплазматическом ретикулюме паразитарной клетки. При этом уязвимым для действия противомалярийных препаратов становится мевалонатный путь биосинтеза изопреноидов, участвующих в процессах трансформации энергии [17]. Повышенный энергетический обмен поддерживается интенсивным клеточным дыханием и активным окислительным фосфорилированием в митохондрии паразита. В связи с этим блокирование химиопрепаратами цитохромоксидазного комплекса приводит к разоб­щению этих процессов и быстрому лечебному эффекту [18]. В процессе жизнедеятельности паразиты экспортируют вирулентные белки в клеточные структуры инфицированного эритроцита [19]. Препараты, нарушающие транспорт паразитарных белков, делают инфицированный эритроцит доступным для факторов клеточного и гуморального иммунитета, тем самым способствуя элиминации паразитов из крови.

83-1.jpg (340 KB)

Несмотря на уязвимость метаболических процессов паразитарной клетки и разнообразие мишеней для действия противомалярийных препаратов, в настоящее время не существует ни одного абсолютно эффективного лекарственного средства [2, 8]. Формирование лекарственной устойчивости паразитов связано с их высокой пролиферативной активностью, а также наличием в геноме плазмодиев вариабельных областей, подверженных SNP-мутациям (single nucleotide polymorphisms) (табл. 4).

Механизм формирования лекарственной устойчивости паразитов зависит от конкретного механизма фармакологического действия противомалярийного препарата. Плазмодии приобретают резистентность в результате мутаций, изменяющих структуру белков и ферментов, которые служат мишенями химиопрепаратов [18, 19, 29].

Так, хлорохин, проникнув в пищеварительную вакуоль плазмодиев, взаимодействует с продуктами деградации гемоглобина, препятствуя преобразованию токсичного для паразитов порфирина в кристаллы гемозина [14, 30]. Формирование устойчивости плазмодиев к действию хлорохина связано с мутациями в генах PfCRT (P. falciparum chloroquine resistance transporter) и PfMDR1 (P. falciparum multi-drug resistant 1), кодирующих структуру транспортных белков мембраны пищеварительной вакуоли [20, 21]. Видоизмененные белки приобретает способность выводить хлорохин, снижая его концентрацию и препятствуя образованию токсичных комплексов.

Механизм противомалярийного действия других производных 4-аминохинолина (мефлохин, хинин, хинидин) сходен с действием хлорохина. Препараты образуют токсичные для паразита комплексы, связываясь с гемом. Устойчивость к их действию также зависит от особенностей транспортных белков PfCRT и PfMDR1, выводящих препараты и их производные через мембрану пищеварительной вакуоли паразитов [31–33]. При этом распространение паразитов, устойчивых к хинину, отличается более медленными темпами. Это указывает на то, что чувствительность P. falciparum к хинину определяется не только локусами PfMDR1 и PfCRT, но зависит и от особенностей других паразитарных генов [34, 35].

Сульфадоксин – сульфаниламидный препарат, применяемый в комбинации с пиреметамином (комбинированный препарат фансидар), ингибирует активность фермента дигидроптероатсинтазы (DHPS), который в цитоплазме паразитов участвует в биосинтезе фолиевой кислоты (витамин В9) [36]. Активная форма витамина В9, тетрагидрофолат (ТГФ), используется микроорганизмами для получения пуриновых азотистых оснований и синтеза собственных нуклеиновых кислот [25]. Точечные мутации в гене, кодирующем структуру DHPS, снижают сродство этого фермента к сульфадоксину [24].

Пириметамин, как и сульфодоксин, действует на бесполые эритроцитарные формы малярийных плазмодиев, подавляя биосинтез нуклеиновых кислот [25]. Пириметамин ингибирует активность дигидрофолатредуктазы (DHFR) и производство тетрагидрофолата [37]. Точечные мутации в гене, кодирующем структуру DHFR, снижают сродство фермента к пириметамину [24]. Паразиты, обладающие резистентностью к сульфодоксину и пиреметамину, не имеют широкого распространения. Однако в настоящее время эти препараты в качестве притивомалярийных средств применяются ограниченно в связи с их побочными действиями.

Атоваквон способен специфически связываться с цитохромом b плазмодиев и ингибировать его действие [38]. Потеря активности цитохромоксидазного комплекса приводит к коллапсу трансмембранного электрохимического потенциала и потере функции паразитарной митохондрии [39]. Помимо разобщения окислительного фосфорилирования атоваквон блокирует воспроизведение плазмодиями собственных нуклеиновых кислот, инактивируя PfDHPS, один из ключевых в биосинтезе пиримидина [40]. Развитие у P. falciparum устойчивости к атоваквону связано с возникновением точечных мутаций и замещением серина тирозином в 268 кодоне гена цитохрома, нуклеотидные последовательности которого входят в состав митохондриальной ДНК [26, 41].

Прогуанил – производное бигуанида. Действие его активного метаболита циклокуанила основано на ингибировании DHFR и блокировании фолатного пути биосинтеза азотистых оснований [42]. Прогуанил также связывает активные формы кислорода в митохондриальном матриксе, потенцируя тем самым действие атоваквона (в комбинированном препарате малорон) [40]. Точечные мутации в структуре DHFR способствуют формированию устойчивости паразитов к циклогуанилу [36, 43].

Доксициклин – антибактериальный препарат тетрациклиновного ряда. Предполагается, что он подавляет синтез паразитами белка на этапе элонгации, предотвращая связывание аминоацил-тРНК с малой рибосомальной субъединицей [8]. Доксициклин нарушает функцию апикопласта P. falciparum, что приводит к медленному, но выраженному антималярийному эффекту [12, 13, 15]. До настоящего времени нет сведений о формировании устойчивости малярийных паразитов человека к доксициклину. Ограниченное использование этого препарата для лечения малярии объясняется медленным формированием лечебного эффекта.

Производные артемизинина (артесунат, артеметер и др.) реализуют свободнорадикальный механизм блокирования метаболизма P. falciparum. Препарат взаимодействует с продуктами деградации гемоглобина, включающими оксид железа (II). Разрыв входящего в структуру действующего вещества эндопероксидного кольца приводит к образованию свободных радикалов, которые в свою очередь повреждают чувствительные белки, что приводит к гибели паразита [8]. Наиболее чувствителен к свободнорадикальному повреждению АТФ-азный кальциевый насос P-типа (P-ATPasa), что приводит к нарушению фолдинга паразитарных белков [22, 23]. В настоящее время установлено ингибирующее действие активной формы дигидроартемизинина на мембранную глутатион-S-трансферазу (glutathione-S-transferase – GST), которая обеспечивает естественный механизм защиты паразитарной клетки от цитотоксического эффекта продуктов деградации гемоглобина, поглощаемого плазмодиями [28]. Эффективным механизмом лекарственного действия производных артемизинина считается также ингибирование транспортной системы (Plasmodium falciparum exported protein 1 – PfEXP1), обеспечивающей экспорт вирулентных паразитарных белков в клеточные структуры инфицированных эритроцитов [44, 45].

Резистентность P. falciparum к действию производных артемизинина ассоциируется главным образом с множественными однонуклеотидными полиморфизмами (SNP) гена kelch-13, который кодирует полипептидную последовательность белка P-ATPasa P. falciparum. Точечные мутации, соответствующие пропеллерной области паразитарного белка, делают невозможным его специфическое связывание активными производными артемизинина [27].

ELQ-300 (Medicines for Malaria Venture – MMV) – перспективный инъекционный препарат длительного действия, первый в новом классе противомалярийных средств, известных как 4-хинолон -3-диариловые эфиры. ELQ-300 избирательно ингибирует митохондриальный электронный транспорт паразита и связанный с ним биосинтез пиримидина [46], тем самым предотвращая синтез нуклеиновых кислот. При этом ELQ-300 действует на консервативный участок цитохрома bc1, что позволяет предположить низкую вероятность формирования резистентности у паразитов. В доклинических исследованиях была показана высокая активность нового средства в отношении всех этапов жизненного цикла P. falciparum, P. vivax и P. knowlesi, в том числе с множественной лекарственной устойчивостью лабораторных штаммов и клинических изолятов. Вероятно, в случае успешного завершения клинических испытаний ELQ-300 может стать новым препаратом выбора для лечения и профилактики малярийной инфекции [47–49].

Таким образом, отмечается дальнейшее распространение малярийных плазмодиев, устойчивых к традиционным противомалярийным препаратам, а также формирование паразитарных штаммов, обладающих резистентностью к новым современным антипаразитарным средствам. Не существует противомалярийных препаратов, в отношении которых плазмодии не могут вырабатывать лекарственной устойчивости.

Основные механизмы лекарственной устойчивости связаны с генетической гетерогенностью возбудителей инфекции. В формировании устойчивости важное значение имеют SNP мутации по локусам генов PfCRT, PfMDR1, PfATP6, PfDHPS, PfDHFR, PfCYTB, а также рекомбинация генетического материала плазмодиев в ходе эритроцитарной шизогонии. Формированию резистентных штаммов и отбору мутаций лекарственной устойчивости способствует длительное персистирование паразитов в крови на фоне приема противомалярийных препаратов. Основными принципами этиотропного лечения малярии должны служить раннее начало лечения, проведение комбинированной терапии с использованием наиболее эффективных противомалярийных препаратов разных фармакологических групп в дозировках, обеспечивающих быструю элиминацию возбудителей из организма больного.

Дальнейшее изучение генетического полиморфизма малярийных плазмодиев по признаку лекарственной устойчивости будет способствовать выработке наиболее эффективных методов лечения и профилактики малярии.


Литература


1. Бронштейн А.М., Малышев Н.А., Лобзин Ю.В. От колониальной и военной медицины к медицине тропической: дорога временных поражений и знаменитых побед. Эпидемиол. и инфекц. бол. 2015; 20(2): 43–8.

Bronshteyn A.M., Malyshev N.A., Lobzin Yu.V.


2. Лысенко А.Я., Кондрашин А.В., Ежов М.Н. Маляриология. 2-е изд. Копенгаген: ВОЗ. Европейское региональное бюро, 2003. 510 с.

Lysenko А.Ya., Kondrashin A.V., Ezhov M.N.


3. Сергиев В.П., Баранова А.М., Кожевникова Г.М., Токмалаев А.К., Чернышев Д.В., Ченцов В.Б., Куасси Д. М. Проблемы клинической диагностики и лечения P. falciparum-малярии в Российской Федерации. Тер. архив 2018; 90(11): 4–8. DOI: 10.26442/terarkh201890114-8

Sergiev V.P., Baranova A.M., Kozhevnikova G.M., Tokmalayev A.K., Chernyshev D.V., Chentsov V.B., Kuassi D.M.


4. WHO. World malaria report 2018. https://www.who.int/malaria/ publications/world-malaria-report-2018/report/en/


5. Баранова А.М., Гузеева Т.М., Морозова Л.Ф. Смертельные исходы от тропической малярии (2009–2012 гг.). Мед. паразитол. и паразитар. бол. 2013; (3): 50–2.

Baranova A.M., Guzeeva T.M., Morozov L.F.


6. Коваленко А.Н., Мусатов В.Б., Соловьев А.И., Капацына В.А. Сложности терапии P. falciparum-малярии в Российской Федерации. Тер. архив 2019; 91(11): 75–80. DOI: 10.26442/00403660.2019.11.000442

Kovalenko A.N., Musatov V.B., Solovev A.I., Kapatcyna V.A.


7. Усков А.Н., Соловьев А.И., Кравцов В.Ю., Гудков Р.В., Коломоец Е. В., Левковский А.Е. Молекулярно-генетические механизмы вирулентности Plasmodium falciparum и патогенеза тропической малярии. Журнал инфектологии 2018; 10 (3): 23–30. https://doi.org/10. 22625/2072-6732-2018-10-3-23-29

Uskov A.N., Solovev A.I., Kravtsov V.Y., Gudkov R.V., Kolomoyets E.V., Levkovskiy A.E.


8. Fairhurst R.M., Wellems T.E. Malaria (Plasmodium Species). In: Bennett J., Dolin R., Blaser M.J. (eds.). Mandell, Douglas and Bennett’s. Principles and Practice of Infectious Diseases. 8th ed. Philadelphia: Elsevier; 2015: 3070–90.


9. WHO. Guidelines for the treatment of malaria, 2015. https://www.who.int/ malaria/publications/atoz/9789241549127/en/


10. Allman E.L., Painter H.J., Samra J., Carrasquilla M., Llinás M. Metabolomic profiling of the malaria box reveals antimalarial target pathways. Antimicrob. Agents Chemother. 2016; 60(11): 6635–49. DOI: 10.1128/ AAC.01224-16


11. Mundwiler-Pachlatkoa E., Beck H.-P. Maurer’s clefts, the enigma of Plasmodium falciparum. PNAS 2013; 110(50): 19987–94. DOI: 10.1073/ pnas.1309247110.


12. Dahl E.L., Shock J.L., Shenai B.R., Gut J., DeRisi J.L., Rosenthal Ph.J. Tetracyclines specifically target the apicoplast of the malaria parasite Plasmodium falciparum. Antimicrob. Agents Chemother. 2006; 50(9): 3124–31. DOI:10.1128/AAC. 00394-06


13. Lim L., McFadden G. The evolution, metabolism and functions of the apicoplast. Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 2010; 365(1541): 749–63. DOI: 10.1098/rstb.2009.0273


14. Chou A.C., Chevli R., Fitch C.D. Ferriprotoporphyrin IX fulfills the criteria for identification as the chloroquine receptor of malaria parasites. Biochemistry 1980; 19(8): 1543–49. DOI: 10.1021/bi00549a600


15. Ralph S.A., D’Ombrain M.C., McFadden G.I. The apicoplast as an antimalarial drug target. Drug Resistance Updates 2001; 4(3): 145–51. DOI:10.1054/drup.2001.0205


16. Mudeppa D.G., Pang C.K., Tsuboi T., Endo Y. Cell-free production of functional Plasmodium falciparum dihydrofolate reductase-thymidylate synthase. Mol. Biochem. Parasitol. 2007; 151(2): 216–9. DOI:10.1016/j. molbiopara.2006.10.016.


17. Ke H., Ganesan S.M., Dass S., Morrisey J.M., Pou S., Nilsen A. et al. Mitochondrial type II NADH dehydrogenase of Plasmodium falciparum (PfNDH2) is dispensable in the asexual blood stages. PLoS One 2019; 14(4): e0214023. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0214023


18. Gray M.W., Lang B.F., Cedergren R., Golding G.B., Pou S., Nilsen A.. et al. Genome structure and gene content in protist mitochondrial DNAs. Nucleic Acids Res. 1998; 26(4): 865878. DOI: 10.1093/nar/26.4.865


19. Daniyan M.O., Przyborski J.M., Shonhai A. Partners in mischief: functional networks of heat shock proteins of Plasmodium falciparum and their influence on parasite virulence. Biomolecules 2019; 9(7): 1–17. DOI: 10.3390/biom9070295


20. Cooper R.A., Ferdig M.T., Su X., Ursos L.M., Mu J., Nomura T. et al. Alternative mutations at position 76 of the vacuolar transmembrane protein PfCRT are associated with chloroquine resistance and unique stereospecific quinine and quinidine responses in Plasmodium falciparum. Molecular. Pharmacol. 2002; 61(1): 35–42. DOI: 10.1124/mol.61.1.35


21. Fidock D.A., Nomura T., Talley A.K., Cooper R.A., Dzekunov S., Ferdig M. et al. Mutations in the P. falciparum digestive vacuole transmembrane protein PfCRT and evidence for their role in chloroquine resistance. Mol. Cell. 2000; 6(4): 861–71. DOI: 10.1016/s1097-2765(05)00077-8


22. Bertaux L., Quang L.H., Sinou V., Thanh N.X., Parzy D. New PfATP6 mutations found in Plasmodium falciparum isolates from Vietnam. Antimicrob. Agents and Chemother. 2009; 53(10): 4570–71. DOI: 10.1128/ AAC.00684-09.


23. Menemedengue V., Sahnouni K., Basco L., Tahar R. Molecular Epidemiology of Malaria in Cameroon. XXX. Sequence Analysis of Plasmodium falciparum ATPase 6, dihydrofolate reductase, and dihydropteroate synthase resistance markers in clinical isolates from children treated with an artesunate-sulfadoxine-pyrimethamine combination. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2011; 85(1): 22–5. DOI: 10.4269/ajtmh.2011.10-0523


24. Peterson D.S., Walliker D., Wellems T.E. Evidence that a point mutation in dihydrofolate reductase-thymidylate synthase confers resistance to pyrimethamine in falciparum malaria. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1988; 85(23): 9114–18. DOI: 10.1073/pnas.85.23.9114


25. Wang P., Read M., Sims P.F.G., Hyde J.E. Sulfadoxine resistance in the human malaria parasite Plasmodium falciparum is determined by mutations in dihydropteroate synthetase and an additional factor associated with folate utilization. Molecular. Microbiology 1997; 23(5): 979–86. DOI: https://doi.org/10.1046/j.1365-2958.1997.2821646.x


26. Fisher N., Majid R.A., Antoine T., Helal M.A., Warman A.J., Johnson D., et al. Cytochrome b mutation Y268S conferring atovaquone resistance phenotype in malaria parasite results in reduced parasite bc1 catalytic turnover and protein expression. J. Biol. Chem. 2012; 287(13): 9731–41. DOI: 10.1074/jbc.M111.324319


27. Miotto O., Amato R., Ashley E.A., Macinnis B., Almagro-Garcia J., Ch. Amaratunga et al. Genetic architecture of artemisinin-resistant Plasmodium falciparum. Nat. Genet. 2015; 47(3): 226–34. DOI:10.1038/ng.3189


28. Njokah M.J., Kang’ethe J.N., Kinyua J., Kariuki D., Kimani F.T. In vitro selection of Plasmodium falciparum PfCRT and PfMDR1 variants by Artemisinin. Malar. J. 2016; 15: 381. https://doi.org/10.1186/s12936-016-1443-y


29. Gardner M.J., Hall N., Fung E., White O. Genome sequence of the human malaria parasite Plasmodium falciparum. Nature 2002; 419(6906): 498–511. DOI: 10.1038/nature01097


30. Verdier F., Bras J.L., Clavier F., Hatin I., Blayo M. Chloroquine uptake by Plasmodium falciparum-infected human erythrocytes during in vitro culture and its relationship to chloroquine resistance. Antimicrob. Agents. Chemother. 1985; 27(4): 561–4. doi: 10.1128/AAC.27.4.561


31. Pickard A.L., Wongsrichanalai C., Purfield A., Kamwendo D., Emery К., Zalewski Ch. et al. Resistance to antimalarials in Southeast Asia and genetic polymorphisms in PfMDR1. Antimicrob. Agents. Chemother. 2003; 47(8): 2418–23. DOI: 10.1128/aac.47.8.2418-2423.2003


32. Price R.N., Uhlemann A.C., Brockman A., McGready R., Ashley E., Phaipun L. et al. Mefloquine resistance in Plasmodium falciparum and increased pfmdr1 gene copy number. Lancet 2004; 364(9432): 438–47. DOI: 10.1016/S0140-6736(04)16767-6


33. Reed M., Saliba K., Caruana S., Kirk K. Pgh1 modulates sensitivity and resistance to multiple antimalarials in Plasmodium falciparum. Nature 2000; 403(6772): 906–9. DOI: 10.1038/35002615


34. Ferdig M.T., Cooper R.A., Mu J., Deng B., Joy D.A., Su X.-Z. et al. Dissecting the loci of low-level quinine resistance in malaria parasites. Mol. Microbiol. 2004; 52(4): 985–97. DOI: 10.1111/j.1365-2958.2004.04035.x


35. Mu J., Ferdig M.T., Feng X., Joy D.A., Duan J., Furuya T. et al. Multiple transporters associated with malaria parasite responses to chloroquine and quinine. Molecular. Microbiology 2003; 49: 977–89. DOI: 10.1046/j.1365-2958.2003.03627.x


36. Triglia T., Menting J.G., Wilson C., Cowman A.F. Mutations in dihydropteroate synthase are responsible for sulfone and sulfonamide resistance in Plasmodium falciparum. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1997; 94(25): 13944–9. DOI: 10.1073/pnas.94.25.13944


37. Cowman A.F., Morry M.J., Biggs B.A., Cross G.A., Foote S.J. Amino acid changes linked to pyrimethamine resistance in the dihydrofolate reductase-thymidylate synthase gene of Plasmodium falciparum. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 1988; 85(23): 9109–13. DOI:10.1073/pnas.85.23.9109


38. Srivastava I.K., Morrisey J.M., Darrouzet E., Daldal F., Vaidya A.B. Resistance mutations reveal the atovaquone binding domain of cytochrome b in malaria parasites. Molecular. Microbiology 1999; 33(4): 704–11. DOI:10.1046/j.1365-2958.1999.01515.x


39. Srivastava I. K., Rottenberg H., Vaidya A.B. Atovaquone, a broad spectrum antiparasitic drug, collapses mitochondrial membrane potential in a malarial parasite. J. Biol. Chem. 1997; 272(7): 3961–66. https://www.jbc.org/ content/272/7/3961.long.


40. Srivastava I.K., Vaidya A.B. A mechanism for the synergistic antimalarial action of atovaquone and proguanil. Antimicrob. Agents. Chemother. 1999; 43(6): 1334–39. DOI: 10.1128/AAC.43.6.1334


41. Schwöbel B., Alifrangis M., Salanti A., Jelinek T. Different mutation patterns of atovaquone resistance to Plasmodium falciparum in vitro and in vivo: rapid detection of codon 268 polymorphisms in the cytochrome b as potential in vivo resistance marker. Malar. J. 2003; 2: 5. https://doi.org/ 10.1186/1475-2875-2-5


42. Fidock D.A., Nomura T., Wellems T.E Cycloguanil and its parent compound proguanil demonstrate distinct activities against Plasmodium falciparum malaria parasites transformed with human dihydrofolate reductase. Molecular. Pharmacology 1998; 54(6): 1140–7. DOI: 10.1124/ mol.54.6.1140.


43. Watkins W.M., Chulay J.D., Sixsmith D.G., Spencer H.C., Howells R.E. A preliminary pharmacokinetic study of the antimalarial drugs, proguanil and chlorproguanil. J. Pharm. Pharmacol. 1987; 39(4): 261–5. DOI: https:// doi.org/10.1111/j.2042-7158.1987.tb06263.x


44. Lisewski A.M., Quiros M., Mittale M., Putlurifgh N., Sreekumar A., Haeggstrom J.Z. et al. Potential role of Plasmodium falciparum exported protein 1 in the chloroquine mode of action. Int. J. Parasitol. Drugs. Drug. Resist. 2018; 8(1): 31–5. DOI: 10.1016/j.ijpddr.2017.12.003.


45. Lisewski A.M., Quiros M., Ng C.L., Adikesavan A.K., Miura K., Putluri N. et al. Supergenomic network compression and the discovery of EXP1 as a glutathione transferase inhibited by artesunate. Cell. 2014; 158(4): 916–28. DOI: 10.1016/j.cell.2014.07.011


46. Miley G.P., Pou S., Winter R., Nilsen A., Li Y., Kelly J.X. et al. ELQ-300 prodrugs for enhanced delivery and single-dose cure of malaria. Antimicrob. Agents. Chemother. 2015; 59(9): 5555–60. DOI: 10.1128/AAC.01183-15


47. Macintyre F., Ramachandruni H., Burrows J.N., Holm R., Thomas A., Möhrle J.J. et al. Injectable anti-malarials revisited: discovery and development of new agents to protect against malaria. Malar. J. 2018; 17: 402. https://doi.org/10.1186/s12936-018-2549-1.


48. Nilsen A., LaCrue A.N., White K.L., Forquer I.P., Cross R.M., Marfurt J. et al. Quinolone-3-diarylethers: a new class of antimalarial drug. Sci. Transl. 2013; 5(177): 1–13. DOI:10.1126/scitranslmed.3005029.


49. Smilkstein M.J., Pou S., Krollenbrock A., Bleyle L.A., Dodean R.A., Frueh L. et al. ELQ-331 as a prototype for extremely durable chemoprotection against malaria. Malar. J. 2019; 18 (1): 291. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC6712883


Об авторах / Для корреспонденции


Соловьев Алексей Иванович – д.м.н., профессор кафедры биологии (с курсом медицинской генетики) ФГБВОУ «Военно-медицинская академия им. С.М.Кирова» Министерства обороны Российской Федерации, Санкт-Петербург, Россия; e-mail: solopiter@gmail.com; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-3731-1756
Усков Александр Николаевич – д.м.н., заместитель директора по научной работе по разработке и координации национальных и международных проектов ФГБУ «Детский научно-клинический центр инфекционных болезней Федерального медико-биологического агентства», Санкт-Петербург, Россия; е-mail: aouskov@gmail.com; ORCID: https://orcid. org/0000-0003-3185-516X
Коваленко Александр Николаевич – д.м.н., доцент кафедры инфекционных болезней (с курсом медицинской паразитологии и тропических заболеваний) ФГБВОУ «Военно-медицинская академия им. С.М. Кирова» Министерства обороны Российской Федерации, Санкт-Петербург, Россия; е-mail: 9268754@mail.ru; ORCID: //orcid.org/0000-0002-2976-8051
Капацына Владимир Александрович – заведующий отделением СПБ ГБУЗ «Клиническая инфекционная больница им. С. П. Боткина», Санкт-Петербург, Россия; е-mail: ingashi@mail.ru; ORCID: https://orcid.org/0000-0002-2976-8051
Ракин Александр Ильич – преподаватель кафедры биологии (с курсом медицинской генетики), ФГБВОУ «Военно-медицинская академия им. С.М.Кирова» Министерства обороны Российской Федерации, Санкт-Петербург, Россия; е-mail: rakinalex@gmail.com; ORCID: https://orcid. org/0000-0001-9085-1287


Похожие статьи


Бионика Медиа