Новые возможности диагностики инфекции, вызванной HHV-8, с использованием иммуноферментного анализа


DOI: https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2019.4.51-57

Амелина Е.А., Арсеньева В.А., Марданлы С.С., Марданлы С.Г., Ротанов С.В.

1) ЗАО «ЭКОлаб», Электрогорск, Московская область, Россия; 2) ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России, Москва, Россия; 3) ГОУ ВО МО «Государственный гуманитарно-технологический университет», Орехово-Зуево, Московская область, Россия; 4) ГБУЗ «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения города Москвы»
Цель исследования. Создание набора реагентов для выявления специфических антител класса G к HHV-8 (Human herpes virus type 8) на основе метода твердофазного иммуноферментного анализа (ИФА).
Материалы и методы. Методом ИФА исследовали образцы сывороток крови ВИЧ-инфицированных, здоровых доноров, детей и пожилых лиц на наличие специфических антител к HHV-8 с подтверждением результатов в реакции иммунофлюоресценции. Исследованы активность и перекрестная реактивность нового набора реагентов по отношению к другим герпесвирусам.
Результаты. Созданный набор реагентов для выявления специфических антител класса G к HHV-8 на основе метода твердофазного ИФА соответствует заявленным показателям.
Заключение. Диагностический тест на основе ИФА позволит быстро проводить скрининг большого количества сывороток для выявления лиц с риском развития саркомы Капощи и проводить сероэпидемиологические исследования.
Ключевые слова: вирус герпеса 8-го типа, иммуноферментный анализ, саркома Капоши

Литература


  1. Марданлы С.Г. Герпесвирусные инфекции. Учебное пособие. Орехово-Зуево: ГГТУ, 2017. 144 с.Mardanly S.G.

  2. Потапова Л.A., Косякова Н.П., Махнева Н.В., Мезенцева М.В. Вирус герпеса 8-го типа и его роль в патологии человека. Вопросы вирусологии 2009; (6): 18–23.Potapova L.A., Kosyakova N.P., Mahneva N.V., Mezenceva M.V.

  3. Lennette E.T., Blackbourn D.J., Levy J.A. Antibodies to Нuman herpesvirus type 8 in the general population and in Kaposi’s sarcoma patients. Lancet 1996; 348: 858–61.

  4. Ablashi D.V., Chatlynne L.G., Whitman J.E. Jr., Cesarman E. Spectrum of Kaposi’s Sarcoma-Associated Herpesvirus, or Human Herpesvirus 8 Diseases. Clin. Microbiol. Rev. 2002; 15(3): 439–64.

  5. Fukumoto H., Kanno T., Hasegawa H., Katano H. Pathology of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus infection. Front. Microbiol. 2011; (2): 175.

  6. Dupin N., Grandadam M., Calvez V., Gorin I., Aubin J.T., Havard S. et al. Herpesviruslike DNA sequences in patients with Mediterranean Kaposi’s sarcoma. Lancet 1995; 345: 761–62.

  7. Chang Y., Cesarman E., Pessin M. S., Lee F., Culpepper J., Knowles D.M., Moore P.S. Identification of herpesvirus-like DNA sequences in AIDS-associated Kaposi’s sarcoma. Science 1994; 266: 1865–69.

  8. Huang Y.Q., Li J.J., Kaplan M.H., Poiesz B., Katabira E., Zhang W.C. et al. Human herpesvirus-like nucleic acid in various forms of Kaposi’s sarcoma. Lancet 1995; 345: 759–61.

  9. Moore P.S., Chang Y. Detection of herpesvirus-like DNA sequences in Kaposi’s sarcoma in patients with and without HIV infection. N. Engl. J. Med. 1995; 332: 1181–85.

  10. Moore P.S., Kingsley L.A., Holmberg S.D., Spira T., Gupta P., Hoover D.R. et al. Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus infection prior to onset of Kaposi’s sarcoma. AIDS 1996; (10): 175–80.

  11. Gao S.J., Kingsley L., Li M., Zheng W., Parravicini C., Ziegler J. et al. KSHV antibodies among Americans, Italians and Ugandans with and without Kaposi’s sarcoma. Nat. Med. 1996; (2): 925–28.

  12. Kedes D.H., Ganem D., Ameli N., Bacchetti P., Greenblatt R. The prevalence of serum antibody to human herpesvirus 8 (Kaposi sarcomaassociated herpesvirus) among HIV-seropositive and high-risk HIV-seronegative women. JAMA 1997; 277: 478–81.

  13. Kedes D.H., Operskalski E., Busch M., Kohn R., Flood J., Ganem D. The seroepidemiology of human herpesvirus 8 (Kaposi’s sarcomaassociated herpesvirus): distribution of infection in KS risk groups and evidence for sexual transmission. Nat. Med. 1996; 2: 918–24.

  14. Koelle D.M., Huang M.L., Chandran B., Vieira J., Piepkorn M., Corey L. Frequent detection of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus (Нuman herpes virus 8) DNA in saliva of human immunodeficiency virus infected men: clinical and immunologic correlates. Infect. Dis. 1997; 176: 94–102.

  15. Simpson G.R., Schulz T.F., Whitby D., Cook P.M., Boshoff C., Rainbow L. et al. Prevalence of Kaposi’s sarcoma associated herpesvirus infection measured by antibodies to recombinant capsid protein and latent immunofluorescence antigen. Lancet 1996; 348: 1133–38.

  16. Smith M.S., Bloomer C., Horvat R., Goldstein E., Casparian J.M., Chandran B. Detection of human herpesvirus 8 DNA in Kaposi’s sarcoma lesions and peripheral blood of human immunodeficiency virus-positive patients and correlation with serologic measurements. J. Infect. Dis. 1997; 176: 84–93.

  17. Spira T.J., Lan L., Dollard S.C., Meng Y.H. et al. Comparison of serologic assays and PCR for diagnosis of Human herpesvirus 8 infection. J. Clin. Microbiol. 2000; 38(6): 2174–80.

  18. Yang T.-C., Chang C.-P., Lan Y.-C., Liu C.-L., Shih M.-C., Wu F.-Y., Lin C.-W. Recombinant ORF66 and ORFK12 antigens for the detection of Human herpesvirus 8 antibodies in HIV-positive and -negative patients. Biotechnology Letters 2009; 31(5): 629–37.

  19. Katano H., Iwasaki T., Baba N., Terai M., Mori S., Iwamoto A., Kurata T., Sata T. Identification of Antigenic Proteins Encoded by Human Herpesvirus 8 and Seroprevalence in the General Population and among Patients with and without Kaposi’s Sarcoma. J. Virol. 2000; 74(8): 3478–85.

  20. Tedeschi R., Dillner J., De Paoli P. Laboratory diagnosis of Human herpesvirus 8 infection in humans. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. 2002; 21: 831–44.

  21. Moses A.V., Fish K.N., Ruhl R., Smith P.P., Strussenberg J.G., Zhu L. et al. Long-term infection and transformation of dermal microvascular endothelial cells by Human herpesvirus 8. J. Virol 1999; 73 (8): 892–902.

  22. Zhu F.X., Chong J.M., Wu L., Yuan Y. Virion proteins of Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus. J. Virol. 2005; 79(2): 800–11.

  23. Katano H., Iwasaki T., Baba N., Teral M., Iwamoto S.M., Kurata T., Sata T. Identification of antigenic proteins encoded by human herpesvirus 8 and seroprevalence in general population among patients with and without Kaposi’s sarcoma. Virology 2000; 74 (8): 3478–85.


Об авторах / Для корреспонденции


Амелина Елена Анатольевна – к.б.н., начальник отдела перспективных разработок ЗАО «ЭКОлаб», Электрогорск, Московская область, Россия; e-mail: ekolab-ferment@mail.ru; ORCID: http:// orcid.org/0000-0001-6979-6631
Арсеньева Вероника Алексеевна – старший микробиолог отдела перспективных разработок ЗАО «ЭКОлаб», Электрогорск, Московская область, Россия; e-mail: ecolab.arsenyeva@gmail.com; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-0517-2181
Марданлы Сархан Сейфаддинович – младший научный сотрудник отдела эпидемиологии ФГБУ «Федеральный научно-исследовательский центр эпидемиологии и микробиологии имени почетного академика Н.Ф. Гамалеи» Минздрава России; заместитель генерального директора по коммерческим вопросам ЗАО «ЭКОлаб», Электрогорск, Московская область, Россия; e-mail: ekolab-sarkhan@mail.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-4440-6075
Марданлы Сейфаддин Гашимович – д.м.н., академик АМТН, заслуженный работник здравоохранения Российской Федерации, профессор кафедры фармакологии и фармацевтических дисциплин ГОУ ВО МО «Государственный гуманитарно-технологический университет»; президент и директор по науке ЗАО «ЭКОлаб», Электрогорск, Московская область, Россия; e-mail: ekolab-president@mail.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-4556-135X
Ротанов Сергей Владимирович – д.м.н., доцент, ведущий научный сотрудник ГБУЗ «Московский научно-практический центр дерматовенерологии и косметологии Департамента здравоохранения города. Москвы» Москва, Россия; e-mail: svrotanov@mail.ru; ORCID: http://orcid.org/0000-0002-3222-1401


Бионика Медиа