ISSN 2226-6976 (Print)
ISSN 2414-9640 (Online)

Формирование специфического Т-клеточного и гуморального иммунитета у непривитых и привитых детей при заболевании коклюшем

Федорова И.М., Попова О.П., Бляхер М.С., Котелева С.И., Скирда Т.А., Капустин И.В., Рамазанова З.К., Тульская Е.А., Сандалова С.В., Одинцов Е.Е., Швецова Ю.В.

1) Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; 2) Российская медицинская академия непрерывного последипломного образования Минздрава России, Москва, Россия; 3) Инфекционная клиническая больница № 1 Департамента здравоохранения города Москвы, Россия
Цель исследования. Изучение взаимосвязи формирования антиген-специфического Т-клеточного и гуморального иммунитета и его цитокиновой регуляции в динамике заболевании коклюшем у детей.
Материалы и методы. Обследованы 100 детей, больных коклюшем, на 2–5-й неделе заболевания и в периоде реконвалесценции. Баланс цитокинов ИФН-γ и ИЛ-4 в крови сопоставляли с динамикой специфического иммунного ответа на антигены B. pertussis. Гуморальный ответ оценивали методом иммуноферментного анализа на тест-системах Ridascreen, а Т-клеточный – по пролиферации лимфоцитов, выделенных из крови больных, после инкубации на планшетах из тех же тест-систем.
Результаты. У 69–92% непривитых детей АГ-специфические Т-клетки выявляются со 2-й по 12-ю недели от начала заболевания с временным резким снижением показателей на 5–6-й неделе. У привитых детей при коклюше иммунный ответ развивается как вторичный, но Т-клетки памяти обнаруживаются не более чем у 67% пациентов.
Заключение. Характер цитокиновой регуляции антителообразования в динамике заболевания коклюшем находит отражение в процессе формирования Т-клеток памяти и зависит от вакцинного анамнеза.

Ключевые слова

коклюш
непривитые дети
привитые дети
Т-клетки памяти
цитокиновая регуляция

В настоящее время все большее внимание исследователей обращается на формирование не только гуморального, но и клеточного иммунитета при инфекционных заболеваниях. По данным иностранной литературы, при коклюше специфический Т-клеточный иммунитет имеет большое значение. Так, антиген-специфические Т-клетки могут играть ведущую роль в эрадикации возбудителя и обеспечивают более длительное сохранение постинфекционного и поствакцинального иммунитета [1, 2].

Проводятся исследования по сравнению способности различных вакцин против коклюша вызывать формирование Т-клеточного иммунитета [3–9]. В то же время постинфекционный Т-клеточный иммунитет против коклюша исследован в основном ретроспективно [10, 11], его формирование в процессе заболевания практически не изучено.

При проникновении B. pertussis в организме запускается иммунный ответ, регулируемый Т-хелперами 1-го типа и Т-хелперами, продуцирующими интерлейкин-17 (ИЛ-17) (Th1/Th17-регулируемый ответ), в ходе которого формируются Т-клетки памяти [1, 2]. С другой стороны, формирование антител против B. pertussis и увеличение их авидности регулируется Т-хелперами 2-го типа (Th2). Активность Th1 и активность Th2 в какой-то мере конкурируют друг с другом, что можно проследить по изменениям в цитокиновой сети [1, 2, 12–14]. Ранее нами было проведено исследование цитокиновой регуляции гуморального иммунного ответа у больных коклюшем, как непривитых, так и привитых против этой инфекции, что позволило выявить различия в зависимости от вакцинного анамнеза [14].

Цель работы – изучение взаимосвязи формирования специфического Т-клеточного и гуморального иммунитета и его цитокиновой регуляции в динамике заболевания коклюшем у детей.

Материалы и методы

Обследование 100 детей, больных коклюшем, находившихся в 2015–2019 гг. на лечении в ИКБ № 1 г. Москвы, было 2-кратным: при госпитализации (на 2–5-й неделе заболевания) и в периоде реконвалесценции (до 12 нед. с момента постановки диагноза). Среди обследованных пациентов было 62 непривитых ребенка в возрасте от 2 мес. до 6 лет и 39 привитых детей 3–14 лет.

Концентрацию антител классов иммуноглобулинов (IgМ, IgG, IgА) в сыворотке крови оценивали методом иммуноферментного анализа (ИФА) в тест-системах Ridascreen/Bordetella pertussis (R-biopharm, Германия). Специфический Т-клеточный ответ оценивали по пролиферации Т-клеток после их 5-суточной инкубации на планшетах, покрытых антигенами B. pertussis из ИФА-наборов Ridascreen/Bordetella pertussis (R-biopharm), и антигенстимулированной продукции интерферона гамма (ИФН-γ), сопровождающей этот процесс [15, 16].

Баланс между активностью регуляторных клеток Th1 и Th2 определяли по соотношению митогенстимулированной продукции ИФН-γ и ИЛ-4 клетками крови пациентов [17].

Концентрацию цитокинов, продукция которых была стимулирована митогенами в образцах цельной крови пациентов или антигенами B. pertussis в образцах лимфоцитов, выделенных из крови пациентов, определяли методом ИФА с использованием тест-систем ЗАО «Вектор-Бест» (Россия).

Данные представлены как среднее (М) ± ошибка средней (m). Статистический анализ данных проведен с использованием пакета статистических программ Microsoft Excel и STATISTICA 10 (StatSoft Inc., США). Достоверность различий оценивали с помощью непараметрического U-критерия Манна–Уитни и t-критерия Стьюдента. Справедливость проверяемой гипотезы исследования оценивали по величине р-value, критическим значением которой считали p < 0,05.

Результаты

Исследование способности Т-клеток крови больного продуцировать ИФН-γ или интерлейкин-4 (ИЛ-4) дает возможность оценить активность в его иммунной системе Th1 и Th2 соответственно. При коклюше активность данных субпопуляций Т-клеток меняется в динамике заболевания и связана с регуляцией формирования гуморального иммунитета. Ранее этот процесс был изучен нами подробно [14]. В настоящей работе мы провели этот анализ для прямой оценки влияния баланса между Th1 и Th2 на формирование антигенспецифических Т-клеток в динамике заболевания коклюшем.

Уровень антител и Т-клеток памяти против B. pertussis, а также параметры цитокиновой сети оценивали в крови больных детей при поступлении в стационар (на 2–6-й неделе заболевания) и через 1–1,5 мес. в периоде реконвалесценции. Такая схема обследования позволяла охватить период до 12 нед. от начала заболевания, причем численность групп на большинстве сроков достигала 16–25 детей, а после 10-й недели – 10–12. Следует отметить, что после 5-й недели заболевания нарастает массив данных, полученных при повторном обследовании пациентов. Если на 5-й неделе их доля составляет около 50% в группе, то на 6–7-й неделе их уже 82%, а после 8-й недели – 100%.

У непривитых больных коклюшем анализ соотношения между активностью Th1 и Th2 по продукции характерных для них цитокинов подтвердил полученные ранее данные о постепенном переходе от активного функционирования Th1 на 1–3-й неделях заболевания к возрастанию активности Th2, регулирующих образование антител против B. pertussis (табл. 1).

38-1.jpg (308 KB)

Поскольку на 5-й неделе показатели баланса между Th1 и Th2, а также регулируемые ими показатели гуморального и клеточного иммунного ответа претерпевают наиболее важные изменения, в таблицах статистическая оценка результатов проведена именно по отношению к 5-й неделе.

Наблюдается увеличение продукции ИЛ-4 Т-лимфоцитами крови и уменьшение продукции ими ИФН-γ. Величина соотношения ИФН-γ/ИЛ-4 на 4–5-й неделях заболевания у больных коклюшем, непривитых против этой инфекции, снижается в среднем в 2–3 раза, а затем восстанавливается. У ранее привитых больных коклюшем, напротив, самые низкие показатели ИФН-γ/ИЛ-4 характерны для 3–4 нед. заболевания, а затем этот показатель увеличивается в 1,5–2 раза.

На формировании антител изменения в цитокиновой сети сказываются следующим образом (табл. 2).

У непривитых пациентов на начальных этапах заболевания преобладает Th1/Th17-регуляция иммунного ответа. Антитела в сыворотке крови представлены в основном IgM. Затем под влиянием нарастающей активности Th2 происходит переключение изотипа антител, и на 5-й неделе в сыворотке крови устойчиво преобладают IgG. IgА на этом сроке регистрируются более чем у 2/3 больных. На 5-й неделе активность Th1 минимальна, а далее наблюдается совместное повышение активности Th1 и Th2 (уровней продукции ИФН-γ и ИЛ-4), что приводит к повышению соотношения ИФН-γ/ИЛ-4. Вероятно, такая активность Т-клеток связана с тем, что выраженный клеточный ответ сочетается в это время с развивающейся продукцией антител.

У ранее привитых детей при заболевании коклюшем с самых ранних сроков в сыворотке крови определяются не только IgМ, но и IgG, IgА. У них реализуется вторичный иммунный ответ на антигены B. pertussis, который также обеспечивается смещением баланса в сторону преобладания Th2 и низкими значениями соотношения ИФН-γ/ИЛ-4 до 5-й недели заболевания. После 5-й недели от начала заболевания средняя концентрация IgM в сыворотке крови больных падает, соотношение ИФН-γ/ИЛ-4 повышается за счет увеличения продукции ИФН-γ при стабильно высоких показателях ИЛ-4. Таким образом, мы наблюдаем не только бустирование гуморального ответа, но и реактивацию клеточного ответа на инфекцию.

Для изучения формирования Т-клеток памяти из крови детей, больных коклюшем, были выделены лимфоциты и проведена их антигенная стимуляция in vitro. В течение 5 сут. лимфоциты, способные распознавать антигены B. pertussis, пролиферировали, а происходящая при этом продукция ими ИФН-γ однозначно показывала, что антигенраспознающие клетки являются Т-лимфоцитами [1, 16]. Для каждого срока заболевания вычислено среднее увеличение концентрации ИФН-γ в присутствии антигена. Также сделана индивидуальная оценка, имеются ли в крови больного Т-клетки памяти, и в каждой группе определен процент больных с положительными пробами, содержащими не менее 50 пг/мл ИФН-γ.

Данные, представленные в табл. 3, свидетельствуют о том, что у 69–72% непривитых детей антигенспецифические (АГ-специфические) Т-клетки выявляются на 2–3-й неделе заболевания (пока в их крови нет антител или есть только IgM в высоком титре). Затем процент проб с Т-клетками, распознающими антигены B. pertussis, резко падает до 54,2% на 4-й и до 36,0% на 5-й неделе. Начиная с 7-й недели, в крови больных вновь выявляют и стабильно регистрируют до 12 нед. АГ-специфические Т-клетки, причем у 75–92% пациентов.

39-1.jpg (131 KB)

Напротив, у привитых детей в начале заболевания АГ-специфические Т-клетки выявляются менее чем в половине проб. На 5–7-й неделе доля больных, в крови которых обнаруживаются Т-клетки памяти, повышается, но все равно остается ниже, чем в группе непривитых.

Взаимосвязь между приведенными в табл 1–3 показателями специфического Т-клеточного и гуморального иммунитета, а также цитокиновой регуляцией их формирования в динамике заболевания графически представлена на рисунках.

На рис. 1 видно, что у привитых детей, переносящих коклюш, на 5-й неделе заболевания увеличивается доля больных с АГ-специфическими Т-клетками в крови и одновременно устойчиво снижается сывороточная концентрации IgM.

39-2.jpg (74 KB)

У непривитых детей (рис. 2) от 2-й до 5-й недели заболевания происходят нарастание сывороточной концентрации IgM и снижение доли больных с АГ-специфическими Т-клетками в крови. Затем баланс Th1 и Th2 резко меняется, IgM постепенно исчезают из крови, а Т-клетки памяти выявляются у все большего числа больных.

40-1.jpg (80 KB)

В обоих случаях динамика формирования Т-клеточного иммунитета приближена к динамике баланса Th1 и Th2, а динамика продукции антител IgM против B. pertussis противоположна ей.

Обсуждение

Полученные данные показывают, что при заболевании у детей, привитых против коклюша, независимо от сроков после проведенной вакцинации, бустирует специфический гуморальный ответ, который поддерживается повышенной активностью Th2. Интенсивность продукции ИЛ-4 у привитых детей на всех сроках превышает таковую у непривитых, но в обоих случаях изменение баланса между Th1 и Th2 в большей степени зависит от изменения продукции ИФН-γ, чем от продукции ИЛ-4. Поэтому с повышением активности Th1, продуцирующих ИФН-γ, после 5-й недели от начала заболевания активизируется формирование Т-клеточного иммунитета.

Среди привитых доля детей, в крови которых обнаруживаются Т-клетки памяти, вплоть до 12-й недели от начала заболевания не превышает 67%, несмотря на то, что у них иммунный ответ развивается как вторичный. Возможно, как обсуждается в иностранной литературе, это связано с широким применением бесклеточных вакцин для профилактики коклюша [1, 3, 18].

Непривитые пациенты активно развивают специфический Т-клеточный иммунитет с ранних сроков заболевания коклюшем. На 2-й неделе в крови только у 3 (17,6%) пациентов обнаруживали IgM к возбудителю коклюша, а Т-клетки, способные распознавать антигены B. pertussis и активироваться, продуцируя ИФН-γ, были выявлены в этой группе у 68,7% детей.

Снижение доли больных с АГ-специфическими Т-клетками в крови совпадает с резким повышением уровня IgG и увеличением активности Th2, с одной стороны, и подавлением активности Th1 – с другой. По-видимому, за эти 2 нед. увеличение численности Т-клеток памяти замедляется, а уже сформировавшиеся Т-клетки, место действия которых при коклюше – в основном лимфоидная ткань легких и верхних дыхательных путей, в меньшем количестве выходят в циркулирующую кровь.

Восстановление и стремительное увеличение доли положительных проб с АГ-специфическими Т-клетками совпадает с 1,5–2-кратным ростом продукции ИФН-γ и сохранением ее на уровне 2400–3400 пг/мл.

Тот факт, что после перенесенного заболевания в периоде реконвалесценции не у всех детей в крови выявляются Т-клетки памяти, по мнению отдельных авторов [19], может быть связан, в частности, с влиянием на формирование Т-клеточного иммунного ответа антибиотикотерапии.

Заключение

Результаты исследования показывают, что АГ-специфические Т-клетки могут быть обнаружены в крови непривитых детей, начиная с ранних сроков заболевания коклюшем. У большинства привитых больных такие клетки появляются в циркулирующей крови после завершения бустерного образования антител. Динамика цитокиновой регуляции антителообразования, закономерной для определенных сроков заболевания коклюшем, находит отражение в процессе формирования Т-клеток памяти.

Список литературы

1. Van Twillert I., Han W.G.H., van Els C.A.C.M. Waning and aging of cellular immunity to Bordetella pertussis. Pathog. Dis. 2015; 73(8): ftv071. doi: 10.1093/femspd/ftv071

2. Lambert E.E., Buisman A.M., van Els C.A.C.M. Superior B. pertussis specific CD4+ T-cell immunity imprinted by natural infection. Adv. Exp. Med. Biol. 2019; 1183: 81–98. doi: 10.1007/5584_2019_405.

3. Ausiello C.M., Mascart F. Corbiere V., Fedele G. Human immune responses to pertussis vaccines. Adv. Exp. Med. Biol. 2019; 1183: 99–113. doi: 10.1007/5584_2019_406.

4. Debrie A.S., Coutte L., Raze D., Mooi F., Alexander F., Gorringe A., et al. Construction and evaluation of Bordetella pertussis live attenuated vaccine strain BPZE1 producing Fim3 Vaccine. 2018; 36(11): 1345–52. doi: 10.1016/j.vaccine.2018.02.017

5. Saso A., Kampmann B., Roetynck S. Vaccine-induced cellular immunity against Bordetella pertussis: harnessing lessons from animal and human studies to improve design and testing of novel pertussis vaccines. Vaccines (Basel). 2021; 9(8): Article 877. doi: 10.3390/vaccines9080877

6. Diavatopoulos. D.A., Edwards K. M. What is wrong with pertussis vaccine immunity? Why immunological memory to pertussis is failing? Cold Spring Harb. Perspect. Biol. 2017; 9(12): a029553. doi: 10.1101/cshperspect.a029553

7. Allen A.C., Mills K.H. Improved pertussis vaccines based on adjuvants that induce cell-mediated immunity. Expert Rev. Vaccines 2014; 13(10): 1253–64. doi:10.1586/14760584.2014.936391

8. Weaver K.L., Blackwood C.B., Horspool A.M., Pyles G.M., Sen-Kilic E., Grayson E.M. et al. Long-term analysis of pertussis vaccine immunity to identify potential markers of vaccine-induced memory associated with whole cell but not acellular pertussis immunization in mice. Front Immunol. 2022; 13: Article 838504. doi: 10.3389/fimmu.2022.838504. eCollection 2022

9. Медкова А.Ю., Лиджиева А.А., Семин Е.Г., Синяшина Л.Н., Сюндюкова Р.А., Снегирева Н.А. и др. Иммуногенность препарата «Живая вакцина интраназального применения для профилактики коклюша» (ГамЖВК) при однократном применении у здоровых добровольцев. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии 2021; 98(6): 706–20. doi:10.36233/0372-9311-194

Medkova A.Yu., Lidzhiyeva A.A., Semin E.G., Sinyashina L.N., Syundyukova R.A., Snegireva N.A. et al. (Immunogenicity of the drug «Live intranasal vaccine for the prevention of pertussis» (GamLPV) with a single use in healthy volunteers). Journal of microbiology, epidemiology and immunobiology 2021; 98(6): 706–20. (In Russ.). doi: 10.36233/0372-9311-194

10. Han W.G.H., Helm K., Poelen M.M.C., Otten H.G., van Els C.A.C.M. Ex vivo peptide-MHC II tetramer analysis reveals distinct end-differentiation patterns of human pertussis-specific CD4+ T-cells following clinical infection. Clin. Immunol. 2015; 157(2): 205–15. doi: 10.1016/j.clim.2015.02.009.

11. Mascart F., Verscheure V., Malfroot A., Hainaut M., Piérard D., Temerman S. et al. Bordetella pertussis infection in 2-month-old infants promotes type 1 T-cell responses. J. Immunol. 2003; 170(3): 1504–9. doi: 10.4049/jimmunol.170.3.1504

12. Бабаченко И.В., Ярв Н.Э., Калинина Н.М., Ценева Г.Я. Особенности клеточного звена и цитокинового профиля иммунного ответа у детей, больных коклюшем. Цитокины и воспаление 2006; 5(4): 3–9. https://elibrary.ru/item.asp?id=22840191

Babachenko I.V., Jarv N.E., Kalinina N.I., Tseneva G.Y. (Peculiarities of cellular immunity and cytokine response in the children with the whooping cough). Cytokiny i vospalenie 2006; 5(4): 3–9. (In Russ.). https://elibrary.ru/item.asp?id=22840191

13. Краснова Е.И., Панасенко Л.M., Ефремов A.B. Содержание противовоспалительных и иммунорегуляторных цитокинов в сыворотке крови больных коклюшем. Инфекционные болезни 2005; 3(1): 36–9.

Krasnova Ye.I., Panasenko L.M., Yefremov A.B. (Concentration of anti-inflammatory and immunoregulatory cytokines in the blood serum of patients with whooping cough). Infectious Diseases 2005; 3(1): 36–9. (In Russ.).

14. Попова О.П., Скирда Т.А., Федорова И.М., Котелева С.И. Особенности специфического гуморального ответа и цитокиновой регуляции при коклюше у детей. Эпидемиол. и инфекц. бол. 2015; 20(5): 42–8.

Popova O.P., Skirda T.A., Fedorova I.M., Koteleva S.I. (Features of the specific humoral response and cytokine regulation in whoopin cough in children). Epidemiologу and Infectious Diseases 2015; 20(5): 42–8. (In Russ.).

15. Федорова И.М., Котелева С.И., Попова О.П. Антиген-специфическая активность лимфоцитов при коклюше у детей. Российский аллергологический журнал 2012; 1(вып. 1): 320–2.

Fedorova I.M., Koteleva S.I., Popova O.P. (Lymphocyte antigen specific proliferative activity during whooping cough in children). Russian Journal of Allergy 2012; 1(issue 1): 320–2. (In Russ.).

16. Бляхер М.С., Федорова И.М., Котелева С.И., Капустин И.В., Лопатина Т.К., Кукушкина Е.А. и др. Антигенная активация лимфоцитов при разных видах инфекционных заболеваний. Медицинская иммунология 2015; 17(спец. вып.): 154.

Blyakher M.S., Fedorova I.M., Koteleva S.I., Kapustin I.V., Lopatina T.K., Kukushkina Ye.A. et al. (Antigenic activation of lymphocytes in various types of infectious diseases). Medical Immunology 2015; 17(Special Issue): 154.

17. Попова О.П., Федорова И.М., Котелева С.И. Особенности цитокинового профиля у детей, больных коклюшем. Эпидемиол. и инфекц. бол. 2013; (5): 33–7. https://cyberleninka.ru/article/n/15779177

Popova O.P., Fedorova I.M., Koteleva S.I. (Features of the cytokine profile in children suffering from pertussis). Epidemiologу and Infectious Diseases 2013; (5): 33–7. (In Russ.).

18. Van der Lee S., Hendrikx L.H., Sanders E.A.M., Berbers G.A.M., Buisman A.M. Whole-cell or acellular pertussis primary immunizations in infancy determines adolescent cellular immune profiles. Front Immunol. 2018; (9): Article 51. doi: 10.3389/fimmu.2018.00051. eCollection 2018

19. Borkner L., Misiak A., Wilk M.M., Mills K.H.G. Azithromycin clears Bordetella pertussis infection in mice but also modulates innate and adaptive immune responses and T-cell memory. Front Immunol. 2018; (9): Article 1764. doi: 10.3389/fimmu.2018.01764. eCollection 2018

Об авторах / Для корреспонденции

Федорова Ирина Михайловна – к.м.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; vestnik-07@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-0335-2752
Попова Ольга Петровна – д.м.н., профессор кафедры детских инфекционных болезней, Российская медицинская академия непрерывного последипломного образования Минздрава России; ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; doctorpopova@yandex.ru; http://orcid.org/0000-0002-1772-5978
Бляхер Мария Сергеевна – д.м.н., профессор, руководитель лаборатории отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; maria.s.b@bk.ru; http://orcid.org/0000-0003-3480-6873
Котелева Светлана Игоревна – к.м.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; felileo@yandex.ru; http://orcid.org/0000-0003-1878-2234
Скирда Татьяна Александровна – к.м.н., ведущий научный сотрудник лаборатории кокковых инфекций эпидемиологического отдела, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; t.skirda@mail.ru; http://orcid.org/0000-0003-4140-1014
Капустин Иван Всеволодович – к.м.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; vano-kapusta@mail.ru; http://orcid.org/0000-0001-6191-260X
Зарема Керимовна Рамазанова – к.м.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; rzarema@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-9314-3312
Тульская Тульская Елена Анатольевна – к.б.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; etul@mail.ru; http://orcid.org/0000-0003-1969-4009
Сандалова Светлана Вячеславовна – научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; s.sandalova74@mail.ru; http://orcid.org/0000-0002-4548-9888
Одинцов Евгений Евгеньевич – к.м.н., старший научный сотрудник отдела иммунологии, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; evgenyodin@yahoo.com; http://orcid.org/0000-0001-5895-2520
Швецова Юлия Вячеславовна – врач-инфекционист, педиатр 3-го педиатрического отделения, Инфекционная клиническая больница № 1 Департамента здравоохранения города Москвы, Москва, Россия; juliashvetsova1983@gmail.com

Также по теме