Бактерии рода Staphylococcus spp. в этиологии гнойно-септических инфекций. Коагулазонегативные стафилококки – новые фавориты и новые направления в контроле заболеваемости

DOI

https://dx.doi.org/10.18565/epidem.2026.165.1.73-79

Борисов А.М., Голубкова А.А., Тутельян А.В., Руженцова Т.А.
1) Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора. Москва, Россия; 2) Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Москва, Россия; 3) Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования Минздрава России, Москва, Россия; 4) Московский медицинский университет «РЕАВИЗ», Москва, Россия

Стафилококки – повсеместно распространенные грамположительные микроорганизмы. По способности коагулировать плазму крови млекопитающих бактерии рода Staphylococcus spp. разделены на 2 кластера: коагулазопозитивные стафилококки (CoPS), к которым относится только один вид – Staphylococcus aureus, и коагулазонегативные (CoNS), которые представлены значительным (более 40) количеством видов. До недавнего времени патогенные характеристики приписывали только S. aureus, однако с начала 1990-х годов стала доступной информация о внутрибольничных вспышках, ассоциированных с CoNS, представители которых, как и S. aureus, в последнее время проявляют устойчивость к метициллину (оксациллину). Несмотря на то, что большинство видов рода Staphylococcus spp. являются симбионтами биотопов организма человека, их патогенный потенциал в последние годы нарастает. Эпидемиологический мониторинг циркуляции бактерий рода Staphylococcus spp. в популяции и изучение механизмов формирования их устойчивости к действию факторов внешней, в том числе больничной, среды необходимы для прогноза эволюции этого рода микроорганизмов и определения их значимости в этиологии внутрибольничных гнойно-септических инфекций в современных условиях.

гнойно-септические инфекции

стафилококки

CoPS

CoNS

MRS

факторы патогенности

вирулентность

резистентность к антибиотикам

механизмы резистентности

Полный текст статьи
доступен в "Библиотеке Врача"

May L., Klein E.Y., Rothman R.E., Laxminarayan R. Trends in antibiotic resistance in coagulase-negative staphylococci in the United States, 1999 to 2012. Antimicrob. Agents Chemother. 2014; 58: 1404–1409. DOI: 10.1128/AAC.01908-13
Becker K., Both A., Weißelberg S., Heilmann .C., Rohde H. Emergence of coagulase-negative staphylococci. Expert Rev. Anti Infect. Ther. 2020; 18: 349–366. DOI: 10.1080/14787210.2020.1730813
Michels R., Last K., Becker S.L., Papan C. Update on coagulase-negative staphylococci-What the clinician should know. Microorganisms 2021; 9(4): 830. DOI: 10.3390/microorganisms9040830
Berends M.S., Luz C.F., Ott A., Andriesse G.I., Becker K., Glasner C. et al. Trends in Occurrence and Phenotypic Resistance of Coagulase-Negative Staphylococci (CoNS) Found in Human Blood in the Northern Netherlands between 2013 and 2019. Microorganisms 2022; 10(9): 1801. DOI: 10.3390/microorganisms10091801
Hefzy E.M., Radwan T.E.E., Hozayen B.M.M., Mahmoud E.E., Khalil M.A.F. Antiseptics and mupirocin resistance in clinical, environmental, and colonizing coagulase negative Staphylococcus isolates. Antimicrob. Resist. Infect. Control. 2023; 12(1): 110. DOI: 10.1186/s13756-023-01310-3
Manoharan M., Sawant A.R., Prashanth K., Sistla S. Multiple mechanisms of linezolid resistance in Staphylococcus haemolyticus detected by whole-genome sequencing. J. Med. Microbiol. 2023; 7: 72. DOI: 10.1099/jmm.0.001737
Pain M., Hjerde E., Klingenberg C., Cavanagh J.P. Comparative Genomic Analysis of Staphylococcus haemolyticus Reveals Key to Hospital Adaptation and Pathogenicity. Front. Microbiol. 2019; 10: 2096. DOI: 10.3389/fmicb.2019.0209
Eltwisy H.O., Twisy H.O., Hafez M.H., Sayed I.M., El-Mokhtar M.A. Clinical Infections, Antibiotic Resistance, and Pathogenesis of Staphylococcus haemolyticus. Microorganisms 2022; 10(6): 1130. DOI: 10.3390/microorganisms10061130
Sato Y., Hatayama N., Tanzawa S., Kimura Y., Wakabayashi Y., Kitazawa T. et al. Staphylococcus haemolyticus attenuates the antibacterial effect of teicoplanin via aggregates and biofilms. Microb. Pathog. 2023; 180: 106152. DOI: 10.1016/j.micpath.2023.106152
Eltwisy H.O., Abdel-Fattah M., Elsisi A.M., Omar M.M., Abdelmoteleb A.A., El-Mokhtar M.A. Pathogenesis of Staphylococcus haemolyticus on primary human skin fibroblast cells. Virulencе 2020; 11(1): 1142–1157. DOI: 10.1080/21505594.2020.1809962
Cheung G.Y.C., Da F., Fisher E.L., Villaruz A.E., Le K.Y., Liu R. et al. Quorum-sensing control of sepsis in the coagulase-negative staphylococcal species Staphylococcus haemolyticus. Cell Rep. 2025; 44(10): 116349. DOI: 10.1016/j.celrep.2025.116349
Wang B., Song C.R., Zhang Q.Y., Wei P.W., Wang X., Long Y.H. et al. The Fusaric Acid Derivative qy17 Inhibits Staphylococcus haemolyticus by Disrupting Biofilm Formation and the Stress Response via Altered Gene Expression. Front. Microbiol. 2022; 13: 822148. DOI: 10.3389/fmicb.2022.822148
Huang Y.H., Yeh Y.R., Lien R.I., Chiang M.C., Huang Y.C. Molecular characteristics and clinical features of Staphylococcus epidermidis healthcare-associated late-onset bacteremia among infants hospitalized in neonatal intensive care units. J. Microbiol. Immunol. Infect. 2023; 56(6): 1214–1225. DOI: 10.1016/j.jmii.2023.08.005
Jo A., Won J., Gil C.H., Kim S.K., Lee K.M., Yoon S.S. et al. Nasal symbiont Staphylococcus epidermidis restricts the cellular entry of influenza virus into the nasal epithelium. NPJ Biofilms Microbiomes 2022; 8(1): 26. DOI: 10.1038/s41522-022-00290-3
Saheb Kashaf S., Harkins C.P., Deming C., Joglekar P., Conlan S. et al. Staphylococcal diversity in atopic dermatitis from an individual to a global scale. Cell Host. Microbe 2023; 31(4): 578–592. DOI: 10.1016/j.chom.2023.03.010
Williams M.R., Cau L., Wang Y., Kaul D., Sanford J.A., Zaramela L.S. et al. Interplay of staphylococcal and host proteases promotes skin barrier disruption in netherton syndrome. Cell Rep. 2020; 30: 2923–2933. DOI: 10.1016/j.celrep.2020.02.021
Edelkamp J., Lousada M.B., Pinto D., Chéret J., O’Sullivan J.D.B., Biundo A. et al. Application of Topical Sandalore® Increases Epidermal Dermcidin Synthesis in Organ-Cultured Human Skin ex vivo. Skin Pharmacol. Physiol. 2023; 36(3): 117–124. DOI: 10.1159/000528402
Wang H.C., Wang C.S., Hsieh S.C., Hung Y.T., Chen H.H. Evaluation of a new-formula shampoo containing 6% glycyrrhetinic acid complex for scalp seborrheic dermatitis: A pilot study. J. Cosmet. Dermatol. 2022; 21(8): 3423–3430. DOI: 10.1111/jocd.14623
Burke Ó., Zeden M.S., O’Gara J.P. The pathogenicity and virulence of the opportunistic pathogen Staphylococcus epidermidis. Virulence 2024; 15(1): 2359483. DOI: 10.1080/21505594.2024.2359483
Both A., Huang J., Qi M., Lausmann C., Weißelberg S., Büttner H. et al. Distinct clonal lineages and within-host diversification shape invasive Staphylococcus epidermidis populations. PLoS Pathog. 2021; 17(2): e1009304. DOI: 10.1371/journal.ppat.1009304
Zheng Y., Hunt R.L., Villaruz A.E., Fisher E.L., Liu R., Liu Q. et al. Commensal Staphylococcus epidermidis contributes to skin barrier homeostasis by generating protective ceramides. Cell Host. Microbe 2022; 30(3): 301–313. DOI: 10.1016/j.chom.2022.01.004
Joubert I.A., Otto M., Strunk T., Currie A.J. Look Who’s Talking: Host and Pathogen Drivers of Staphylococcus epidermidis Virulence in Neonatal Sepsis. Int. J. Mol. Sci. 2022; 23(2): 860. DOI: 10.3390/ijms23020860
Nasaj M., Saeidi Z., Asghari B., Roshanaei G., Arabestani M.R. Identification of hemolysin encoding genes and their association with antimicrobial resistance pattern among clinical isolates of coagulase-negative Staphylococci. BMC Res. Notes 2020; 13(1): 68. DOI: 10.1186/s13104-020-4938-0
Abbasi Montazeri E., Seyed-Mohammadi S., Asarehzadegan Dezfuli A., Khosravi A.D., Dastoorpoor M. et al. Investigation of SCCmec types I-IV in clinical isolates of methicillin-resistant coagulase-negative staphylococci in Ahvaz, Southwest Iran. Biosci. Rep. 2020; 40(5): BSR20200847. DOI: 10.1042/BSR20200847
Crepin D.M., Chavignon M., Verhoeven P.O., Laurent F., Josse J., Butin M. Staphylococcus capitis: insights into epidemiology, virulence, and antimicrobial resistance of a clinically relevant bacterial species. Clin. Microbiol. Rev. 2024; 37(3): e0011823. DOI: 10.1128/cmr.00118-23
Romero L.C., Silva L.P., Teixeira N.B., de Camargo K.V., Del Masso Pereira M.A. et al. Staphylococcus capitis Bloodstream Isolates: Investigation of Clonal Relationship, Resistance Profile, Virulence and Biofilm Formation. Antibiotics (Basel) 2024; 13(2): 147. DOI: 10.3390/antibiotics13020147
Heath V., Cloutman-Green E., Watkin S., Karlikowska M., Ready D., Hatcher J. et al. Staphylococcus capitis: Review of Its Role in Infections and Outbreaks. Antibiotics (Basel) 2023; 12(4): 669. DOI: 10.3390/antibiotics12040669
Cruikshank M.J., Pitzer J.M., Ameri K., Rother C.V., Cooper K., Nuxoll A.S. Characterization of Staphylococcus lugdunensis biofilms through ethyl methanesulfonate mutagenesis. AIMS Microbiol. 2024; 10(4): 880–893. DOI: 10.3934/microbiol.2024038
Palumbo K.D., Jacko N.F., David M.Z. Clinical presentation, treatment, and antimicrobial susceptibility of 155 sequential Staphylococcus lugdunensis infections. Microbiol. Spectr. 2025; 13(4): e0274924. DOI: 10.1128/spectrum.02749-24
Koumaki D., Maraki S., Evangelou G., Rovithi E., Petrou D., Apokidou E.S. et al. Clinical Significance and Microbiological Characteristics of Staphylococcus lugdunensis in Cutaneous Infections. J. Clin. Med. 2024; 13(15): 4327. DOI: 10.3390/jcm13154327
Ravaioli S., De Donno A., Bottau G., Campoccia D., Maso A., Dolzani P. et al. The Opportunistic Pathogen Staphylococcus warneri: Virulence and Antibiotic Resistance, Clinical Features, Association with Orthopedic Implants and Other Medical Devices, and a Glance at Industrial Applications. Antibiotics (Basel) 2024; 13(10): 972. DOI: 10.3390/antibiotics13100972
Zhang X., Zhou Y., Fu L., Zhou L., Cheng X., Zhang W. et al. WGS Analysis of Staphylococcus warneri Outbreak in a Neonatal Intensive Care Unit. Infect. Drug Resist. 2024; 17: 4279–4289. DOI: 10.2147/IDR.S473525
Al-Trad E.I., Che Hamzah A.M., Puah S.M., Chua K.H., Kwong S.M., Yeo C.C. et al. Comparative Genomic Analysis of a Multidrug-Resistant Staphylococcus hominis ShoR14 Clinical Isolate from Terengganu, Malaysia, Led to the Discovery of Novel Mobile Genetic Elements. Pathogens 2022; 11(12): 1406. DOI: 10.3390/pathogens11121406
Kini P., Wireko S., Osei-Poku P., Asiedu S.O., Amewu E.K.A., Asiedu E. et al. Antibiotic resistance and mecA characterization of Staphylococcus hominis from filarial lymphedema patients in the Ahanta West District, Ghana: A cross-sectional study. Health Sci. Rep. 2023; 6(2): e1104. DOI: 10.1002/hsr2.1104
Severn M.M., Williams M.R., Shahbandi A., Bunch Z.L., Lyon L.M., Nguyen A. et al. The Ubiquitous Human Skin Commensal Staphylococcus hominis Protects against Opportunistic Pathogens. mBio 2022; 13(3): e0093022. DOI: 10.1128/mbio.00930-22

Борисов Александр Михайлович － аспирант, Московский НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского Роспотребнадзора, Москва, Россия; simba.key@gmail.com; http://orcid.org/0009-0000-2272-0082
Голубкова Алла Александровна － д.м.н., профессор, ведущий научный сотрудник, Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора; ведущий научный сотрудник, Российская медицинская академия непрерывного профессионального образования Минздрава России, Москва, Россия; allagolubkova@yandex.ru; http://orcid.org/0000-0003-4812-2165
Тутельян Алексей Викторович － академик РАН, д.м.н., профессор, заведующий лабораторией инфекций, связанных с оказанием медицинской помощи, Центральный НИИ эпидемиологии Роспотребнадзора, Москва, Россия; bio-tav@yandex.ru; http://orcid.org/0000-0002-2706-6689
Руженцова Татьяна Александровна － д.м.н., профессор, заведующая кафедрой внутренних болезней, Московский медицинский университет «РЕАВИЗ», Москва, Россия; ruzhencova@gmail.com; http://orcid.org/0000-0002-6945-2019

Борисов А.М., Голубкова А.А., Тутельян А.В., Руженцова Т.А.

Ключевые слова

Список литературы

Об авторах / Для корреспонденции

Также по теме